Выделение, идентификация и характеристика изолятов вирусов инфекционного бронхита кур и инфекционного ларинготрахеита птиц

Тип работы:
Диссертация
Предмет:
Биологические науки
Страниц:
156


Узнать стоимость новой

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

Актуальность темы. В связи с постоянной интенсификацией промышленного птицеводства, выведением новых высокопродуктивных пород птицы, расширением международных экономических связей, включающих закупку племенной птицы за рубежом, на территории нашей страны регистрируются новые инфекционные болезни домашней птицы, а также появляются вариантные изоляты уже известных вирусов, способные вызывать заболевания даже у вакцинированной птицы. Поэтому постоянный мониторинг таких экономически значимых заболеваний, в том числе инфекционного бронхита кур и инфекционного ларинготрахеита птиц, позволяет контролировать их распространение и обеспечивать эффективность профилактических мероприятий. Важное значение при этом имеют выделение изолятов вирусов и изучение их биологических свойств, в частности для создания новых вакцин с целью достижения максимальной эффективности профилактических мероприятий.

Инфекционный бронхит кур (ИБК) — высококонтагиозное заболевание, которое поражает птиц различного возраста в хозяйствах мясного и яичного направления и широко распространено во многих странах. Возбудителем заболевания является РНК-содержащий вирус сем. Coronaviridae, рода Coronavirus. При развитии заболевания поражаются респираторные органы, почки, а также репродуктивные органы и кишечник кур. Экономические потери связаны со снижением прироста массы тела у цыплят-бройлеров, снижением яичной продуктивности, ухудшением качества яиц у несушек и родительского поголовья кур.

Вирус ИБК исключительно разнообразен и имеет большое количество серотипов и вариантов. Причиной такого антигенного многообразия вируса ИБК является его чрезвычайно высокая изменчивость. Антигенные различия между вирусами возникают в результате спонтанных мутаций в определенных участках структурных генов, кодирующих иммунодоминантные области. Известно большое количество серотипов вируса (по разным данным от 20 до 30), при этом иммунитет, приобретенный к одному серотипу, не дает перекрестной защиты от заражения другим серотипом, что значительно осложняет профилактику ИБК. Это обуславливает постоянное проведение исследований по выявлению новых изолятов вируса ИБК, изучению их иммуно-биологических свойств и получению на их основе живых и инактивированных вакцин.

С середины 1990-х гг. в нашем институте проводится обследование птицехозяйств из различных регионов России на наличие антител к вирусу ИБК. Было показано широкое распространение заболевания на птицефабриках Российской Федерации.

В результате исследований более 250 проб патологического материала, полученных из птицехозяйств в 1999—2004 гг., методами ПЦР и секвенирования было выявлено и типировано 57 изолятов вируса ИБК. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что спектр вирусов ИБК, циркулирующих в настоящее время в России, очень разнообразен. Наряду с изолятами группы Массачусетс, выявляемыми ранее, и изолятами европейского происхождения, широко распространены эндемичные для России вариантные изоляты.

Постоянное выявление и изучение новых изолятов вируса, а также широкий генетический спектр уже выявленных, указывают на необходимость постоянного мониторинга за данным заболеванием с использованием всех имеющихся диагностических методов исследования, что говорит об актуальности работы.

Инфекционный ларинготрахеит птиц (ИЛТ) — контагиозная вирусная болезнь кур, индеек, цесарок, фазанов, характеризующаяся поражением слизистых оболочек верхних дыхательных путей и глаз. В естественных условиях к инфекционному ларинготрахеиту восприимчивы куры всех возрастных фупп. Чаще всего вирус поражает кур-несушек, материнское поголовье, однако регистрируются вспышки и у бройлеров. В настоящее время ИЛТ встречается повсеместно во всех странах мира. В крупных птицеводческих хозяйствах промышленного типа ИЛТ наносит значительный экономический ущерб.

Источником возбудителя при инфекционном ларинготрахеите является больная и переболевшая птица, а также птица с бессимптомным течением ИЛТ. После переболевания ИЛТ у кур наблюдается длительное вирусносительство — до двух лет и более. После острой фазы инфекции может наступить латентный период с сохранением генетического материала вируса в ДНК нейроцитов ганглия тройничного нерва.

Только в случае острой формы заболевания с высокой смертностью и отхаркиванием крови ларинготрахеит может быть точно диагностирован по клиническим симптомам. В случае легкого течения заболевания, а также при смешанной инфекции требуется лабораторное подтверждение диагноза. Основными методами диагностики ИЛТ являются обнаружение внутриклеточных телец-включений, выделение вируса на развивающихся куриных эмбрионах (КЭ) и идентификация инфицирующего агента в серологических реакциях (РДП, РН, РИД, ИФА) или методами электронной микроскопии. Все эти методы обладают различной чувствительностью и требуют предварительного пассирования вируса на КЭ. В результате постановка диагноза занимает длительное время. Поэтому разработка экспресс-методов диагностики ИЛТ, таких как ПЦР, является актуальной проблемой.

Цель и задачи исследования.

Основная цель данных исследований заключалась в разработке метода выделения и идентификации изолятов вируса ИБК и ИЛТ, определении первичной структуры вариабельных фрагментов вирусных геномов, изучении биологических свойств выделенных вирусов, таких как способность размножаться в чувствительных системах (куриных эмбрионах или культурах клеток), вирулентность, иммуногенность для восприимчивых животных, а также в совершенствовании методов диагностики ИЛТ.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи: разработать комплексную методику выделения и идентификации изолятов вируса ИБК и ИЛТ из различных вируссодержащих материалов- изучить биологические свойства изолятов вируса ИБК, выделенных из полевых образцов, для возможного использования их в составе инактивированной вакцины для профилактики ИБК в птицехозяйствах- оптимизировать условия постановки реакции РДП для индикации ИЛТ- разработать метод индикации генома вируса ИЛТ в различных вируссодержащих материалах на основе ПЦР- изучить биологические свойства изолятов вируса ИЛТ, выделенных в России, и вакцинных отечественных и зарубежных штаммов вируса ИЛТ- провести анализ нуклеотидной последовательности некоторых участков генома изолятов вируса ИЛТ, выделенных в России, а также вакцинных отечественных и зарубежных штаммов вируса ИЛТ.

Научная новизна исследования.

Впервые изучены биологические свойства и определены нуклеотидные последовательности вариабельной области гена S1 изолятов вируса ИБК & laquo-Калужский»- и & laquo-Таганрогский»-, выделенных во ВНИИЗЖ.

Штаммы депонированы в коллекции ВГНКИ под номерами & laquo-Калужский №-121-ДЕП& raquo- и & laquo-Таганрогский №-120 ДЕП& raquo-.

Разработан метод выявления генома вируса ИЛТ в различных вируссодержащих материалах на основе ПЦР.

Впервые определена нуклеотидная последовательность участков генов ICP4 и ТК18 изолятов и 9 вакцинных штаммов вируса ИЛТ.

Создан банк данных нуклеотидных последовательностей участков генов ICP4 и ТК вируса ИЛТ.

Практическая значимость исследования.

Разработана методика выделения и идентификации изолятов вирусов ИБК и ИЛТ, позволяющая выделять вирус из различных вируссодержащих материалов и оценивать его биологические свойства. С помощью разработанной методики было проанализировано 79 проб патматериала, поступивших на исследование из птицехозяйств различных регионов России в течение 1999−2004 гг., с подозрением на ИБК и 85 проб патматериала с подозрением на ИЛТ. В 41 пробе был выявлен вирус ИБК, в 18 — вирус ИЛТ.

С помощью разработанного метода проведено выделение 18 изолятов вируса ИЛТ из патматериала, поступавшего на исследование из различных птицефабрик России в 1999—2004 гг., а также 4 отечественных и 5 зарубежных вакцинных штаммов.

Разработан метод индикации генома вируса ИЛТ на основе ПЦР с праймерами, ограничивающими области генов! СР4 и ТК, позволяющий выявлять геном возбудителя в различных вируссодержащих материалах в течение 4−6 часов без предварительного выделения вируса в куриных эмбрионах.

Методы выделения и идентификации полевых изолятов вируса ИБК, выделения, титрования и идентификации вируса ИЛТ, индикации генома вируса ИЛТ с помощью полимеразной цепной реакции одобрены Ученым советом и утверждены директором ВНИИЗЖ, а также Департаментом ветеринарии МСХ РФ и в настоящее время рекомендованы для использования в практике.

Публикация научных исследований.

По теме научных исследований опубликовано 10 научных работ. и

Апробация работы.

Основные материалы диссертации были доложены и опубликованы в материалах IV и V Всероссийских научно-практических конференций & laquo-Генодиагностика инфекционных заболеваний& raquo-, Москва 2002 и 2004 гг., Международной научной конференции & laquo-Актуальные проблемы инфекционной патологии животных& raquo- ВНИИЗЖ, г. Владимир (2003 г.), международной научной конференции молодых ученых & laquo-Проблемы мониторинга и генодиагностики инфекционных болезней животных& raquo- ВНИИЗЖ, г. Владимир (2004 г.).

Структура и объем работы.

Диссертация изложена на 156 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, результаты собственных исследований и их обсуждение, заключение, выводы и приложение. Список литературы включает 203 источника. Работа иллюстрирована 12 рисунками и 15 таблицами.

6. ВЫВОДЫ

1. Разработаны комплексные методы выявления, идентификации и дифференциации вирусов инфекционного бронхита кур и инфекционного ларинготрахеита птиц в полевых изолятах, включающие в себя первичное выявление геномов вирусов в пробах патологического материала в ПЦР, дальнейшее выделение вирусов в чувствительной системе и их последующую идентификацию в серологических реакциях и методом прямого секвенирования, позволяющие проводить надежную и быструю диагностику инфекционного бронхита кур и инфекционного ларинготрахеита птиц.

2. Выделены два полевых изолята вируса ИБК, изучены их биологические свойства. Штаммы депонированы во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов, применяемых в ветеринарии и животноводстве (ВГНКИ) и рекомендованы для использования в качестве производственных штаммов при изготовлении полиштаммной инактивированной вакцины против инфекционного бронхита кур.

3. Установлено, что выделенный изолят вируса ИБК & laquo-Калужский»-, является вариантным и имеет отличия более чем на 25% по первичной структуре фрагмента гена S1 от референтных штаммов, а изолят вируса ИБК & laquo-Таганрогский»- имеет 98% гомологию с европейскими изолятами и относится к серотипу 793/В.

4. При определении степени антигенного родства выделенных изолятов в реакции перекрестной нейтрализации с известными референтными штаммами установлено, что изолят & laquo-Калужский»- не обнаруживет близкого антигенного родства ни с одним из использованных референтных штаммов. Изолят & laquo-Таганрогский»- имел наиболее близкое (54%) антигенное родство к штамму 4/91 (серотип 793/В).

5. Разработан метод индикации генома вируса инфекционного ларинготрахеита птиц на основе ПЦР с праймерами, ограничивающими фрагменты генов ICP4 и ТК, позволяющий выявлять вирусный геном в течение 6−8 часов в различных вируссодержащих образцах.

6. Определена первичная нуклеотидная последовательность 18 полевых изолятов и 9 вакцинных штаммов вируса ИЛТ методом прямого секвенирования амплифицированных в ПЦР фрагментов кДНК генов ICP4 и ТК вируса ИЛТ.

7. Создан банк данных нуклеотидных и соответстующих аминокислотных последовательностей отечественных и зарубежных штаммов вируса ИЛТ. Среди исследованных вакцинных штаммов и изолятов вируса ИЛТ выявлены 2 генетические группы, отличающиеся по структуре вариабельного фрагмента гена ICP4.

8. В результате применения разработанной методики концентрирования вируссодержащего сырья для идентификации вируса ИЛТ в РДП, чувствительность реакции увеличилась в среднем в 4 раза.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Для практического использования предлагаются следующие методические указания и методики, которые разработаны при выполнении научных исследований по теме, одобренные Ученым советом и утвержденные директором ВНИИЗЖ:

— & laquo-Методические указания по выделению, титрованию и идентификации вируса инфекционного ларинготрахеита& raquo- (утверждены директором ВНИИЗЖ в 2001 г.).

— & laquo-Методические указания по выделению и идентификации полевых изолятов вируса инфекционного бронхита кур& raquo- (утверждены директором ВНИИЗЖ в 2001 г.)

— & laquo-Методика выявления генома вируса инфекционного ларинготрахеита птиц методом полимеразной цепной реакции& raquo- (утверждена директором ВНИИЗЖ в 2004 г.)

2. Депонированы во Всероссийской коллекции штаммов микроорганизмов при ВГНКИ следующие штаммы: & laquo-Таганрогский №-120 ДЕП& raquo- и & laquo-Калужский №-121 ДЕП, которые разрешены к применению в ветеринарии и животноводстве и рекомендованы для использования при изготовлении инактивированной вакцины для профилактики инфекционного бронхита кур

3. Создан банк нуклеотидных и соответствующих аминокислотных последовательностей фрагмента гена ICP4 отечественных и зарубежных штаммов вируса ИЛТ, который может быть использован для идентификации штаммов вируса ИЛТ.

5. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате проведенных исследований нами была разработана комплексная методика выделения вирусов ИБК и ИЛТ из патматериала, которая включала в себя первичное выявление генома вирусов в пробах патологического материала в ПЦР со специфическими праймерами, дальнейшее выделение их в чувствительных системах (КЭ или культурах клеток) и последующую идентификацию выделенных вирусов в серологических реакциях, а также молекулярно-биологическими методами. Поскольку при выделении вируса из проб патологического материала при проведении первых пассажей не всегда проявляются видимые изменения, характерные для вирусного действия, приходится проводить слепые пассажи. Первичная индикация генома в патматериале методами ПЦР позволяет избежать ложноотрицательных результатов. Дальнейшее секвенирование выделенных вирусных образцов позволяет обратить особое внимание на некоторых представителей, как представляющих интерес для их более детального изучения.

С применением разработанных методов в период с 1999 по 2004 гг. нами было проанализировано 250 проб патматериала, поступившего на исследование с подозрением на ИБК из 149 птицехозяйств, и 85 проб из 80-хозяйств с подозрением на ИЛТ. В результате в 111 пробах из 111 хозяйств был выявлен вирус ИБК, в 20 из 20- вирус ИЛТ.

При анализе генетической вариабельности гена S1 вируса ИБК выявленных изолятов для дальнейших исследований нами были отобраны 2 изолята вируса ИБК, названные впоследствие & laquo-Калужский»- и & laquo-Таганрогский»-. Изолят & laquo-Калужский»- по результатам секвенирования был отнесен к вариантным изолятам и имел отличие от имеющихся в Genbank последовательностей более чем на 25%. Изолят & laquo-Таганрогский»- имел высокую гомологию со штаммом 4/91 серотипа 793/В, относящегося к группе европейских штаммов.

Исследования спектра циркулирующих на территории России вирусов ИБК, проведенные в последние годы, показали, что имеется тенденция к увеличению числа изолятов, относящихся к европейским штаммам (4/91, D274). Основываясь на значениях уровня гомологии первичных структур гена S1, нельзя точно предсказать антигенных взаимоотношений вирусов, однако можно предположить, что чем выше гомология первичных последовательностей, тем больше вероятность сходства их антигенных свойств. Нами были изучены биологические свойства выделенных изолятов и полученные результаты подтвердили это предположение. Изолят & laquo-Калужский»-, имеющий отличия более 25% по первичной структуре фрагмента гена S1, по результатам проведения перекрестной реакции нейтрализации показал высокое серологическое отличие от референтных штаммов, относящимся к различным серотипам и имеющихся в нашем распоряжении. Изолят & laquo-Таганрогский»- имел 95% гомологию первичной структуры фрагмента гена S1 с вакцинным штаммом 4/91(серотип 793/В). Серологические исследования также показали, что данный изолят относится к серотипу 793/В.

Оба изолята депонированы во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве как & laquo-Таганрогский №-120 ДЕП& raquo- и & laquo-Калужский №-121 ДЕП& raquo- и предложены для использования в качестве производственных штаммов при изготовлении инактивированной вакцины против инфекционного бронхита кур.

Разработанная нами методика ПЦР для первичного выявления вируса ИЛТ в пробах патматериала позволила уменьшить сроки постановки диагноза. Кроме того, отпадала необходимость проведения дорогостоящего вирусовыделения на КЭ в тех случаях, когда геном вируса ИЛТ первоначально не выявлялся в пробах патологического материала, поступающего на исследование. Методика обладает высокой специфичностью и чувствительностью, позволяя выявлять вирус даже в следовых количествах. При сравнении его с классическими методами (вирусовыделение и РДП) и ИФА была установлена его большая чувствительность.

Секвенирование амплифицированных фрагментов генов ICP4 и ТК и последующая компьютерная обработка данных позволили создать банк нуклеотидных последовательностей изолятов, выделенных на территории России, а также вакцинных отечественных и зарубежных штаммов вируса ИЛТ. По данным секвенирования фрагментов генов ICP4 и ТК все штаммы четко разделялись на две группы с отличием до 4,5% по гену ICP4. По биологическим свойствам, а также в реакции нейтрализации не удалось провести корреляции с делением на антигенные группы.

Были изучены биологические свойства изолятов, выделенных на территории РФ за последние годы, и некоторых вакцинных штаммов вируса ИЛТ, применяемых для профилактики ИЛТ на территории РФ и за рубежом. Изучали способность к репродукции в КЭ, характер поражения ХАО, возможность выявления вируса ИЛТ из различных вируссодержащих материалов в реакциях ИФА и РДП.

Для идентификации выделенных штаммов вируса ИЛТ нами предложено включить в схему лабораторной диагностики РДП и блокирующий вариант ИФА. Совершенствование метода постановки классической РДП сводилось к разработке метода концентрирования исследуемой пробы, что позволило увеличить чувствительность реакции. Применение метода блокирующего варианта ИФА позволило оценивать активность и специфичность выделенного антигена.

Таким образом, с применением разработанных нами методов были выделены, изучены и охарактеризованы изоляты вирусов ИБК и ИЛТ, циркулирующие на территории России, а также отечественные и зарубежные вакцинные штаммы вируса ИЛТ.

ПоказатьСвернуть

Содержание

1. ВВЕДЕНИЕ

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. Инфекционный бронхит кур (ИБК)

2.1.1. Патогенез и эпизоотология инфекционного бронхита кур

2.1.2. Классификация и структура возбудителя

2.1.3. Антигенная вариабельность вируса ИБК 19 2.1.4 Антигенные свойства пепломерного белка S1 23 2.1.5. Характеристика изолятов вируса ИБК, выделенных на птицефабриках России

2.2. Инфекционный ларинготрахеит птиц

2.2.1. Патогенез и эпизоотология инфекционного ларинготрахеита

2.2.2. Классификация и физико-химические свойства вируса ИЛТ

2.2.3. Репликация вируса инфекционного ларинготрахеита

2.2.4. Диагностика инфекционного ларинготрахеита птиц

2.2.5. Дифференциация вакцинных штаммов ИЛТ и полевых изолятов

2.3. 3аключение по обзору литературы

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 54 3.1. Материалы

3.1.1. Вирус ИБК

3.1.2. Вирус ИЛТ

3.1.3. Химические реагенты

3.1.4. Ферменты

3.1.5. Праймеры

3.1.6. Оборудование

3.2. Методы

3.2.1. Очистка и концентрирование вируса ИБК

3.2.2. Очистка и концентрирование вируса ИЛТ

3.2.3. Титрование вирусов ИБК и ИЛТ

3.2.4. Контроль вируссодержащего сырья на отсутствие контаминации бактериальной и грибной микрофлорой

3.2.5. Контроль вируссодержащего материала на отсутствие контаминации микоплазмами

3.2.6. Непрямой вариант ИФА

3.2.7. Блокирующий вариант ИФА

3.2.8. Выделение суммарной ДНК и РНК

3.2.9. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)

3.2. 10. Прямое секвенирование амплифицированных фрагментов & laquo-ДНК

3.2. 11. Компьютерный анализ первичных структур нуклеиновых кислот

3.2. 12. Получение гипериммунных сывороток

3.2. 13. Реакция нейтрализации

3.2. 14. РДП для выявления вируса ИЛТ

3.2. 15. Статистическая обработка полученных результатов 72 4. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И

ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

4.1. Определение видовой принадлежности и выделение изолятов вируса ИБК & laquo-Калужский»- и & laquo-Таганрогский»- из полевых

4.2. Изучение антигенных свойств выделенных изолятов вируса ИБК в реакции перекрестной нейтрализации

4.3. Изучение способности выделенных изолятов ИБК к репродукции в КЭ

4.4. Определение вирулентности выделенных изолятов вируса ИБК 91 т 4.5. Определение антигенной активности изолятов вируса ИБК

4.6. Индикация генома вируса ИЛТ с помощью амплификации фрагмента кДНК области генов ТК и ICP

4.7. Секвенирование амплифицированных участков генов ICP4 и ТК вируса ИЛТ и анализ генетической вариабельности

4.8. Выделение вируса ИЛТ из полевых проб

4.9. Идентификация выделенных вирусов средствами электронной т микроскопии, в реакциях нейтрализации, РДП и ИФА

Список литературы

1. Бабкин В. Ф. Инфекционный ларинготрахеит // Респираторные болезни с. -х. животных. М: Колос, 1986. С. 143 — 150.

2. Бирман Б. Я., Дягилев К. К., Громов И. Н. Инфекционный ларинготрахеит птиц // Минск. 2002. — 71 с.

3. Бочков Ю. А. Метод штаммовой дифференциации вируса инфекционного бронхита кур и анализ изолятов вируса, выделенных на территории России: Авт. дис. канд. биол. наук, Владимир. 1999. -26 с.

4. Бочков Ю. А., Батченко Г. В., Луговская Н. Н. и др. Изучение инфекционного бронхита кур в России: исторический аспект // Акт пробл. инфекц. патол. ж-ных.: Матер. Междунар. научн. конф. посвящ. 45-летию ВНИИЗЖ, 30−31 окт., 2003. Владимир, 2003. — С.

5. Бочков Ю. А., Борисов А. В., Фролов С. В. и др. Диагностика инфекционного бронхита кур // Ветеринария. 2003. — № 4. — С. 21 — 24.

6. Бочков Ю. А., Борисов А. В., Щербакова Л. О., Дрыгин В. В. Филогенетический анализ изолятов вируса инфекционного бронхита кур, выявленных в России //Аграрная Россия. 2002. — № 2. — С. 11−16.

7. Бочков Ю. А., Щербакова Л. О., Батченко Г. В. и др. Молекулярная диагностика респираторных заболеваний кур инфекционного бронхита и пневмовирусной инфекции в России // Генодиагностика инфекционных заболеваний: Матер, конф. — М., 2002. — С. 324 — 327.

8. Вирусные болезни животных // Сюрин В. Н., Самуйленко А. Я., Соловьев Б. В., Фомина Н. В. М.-. ВНИТИБП, 1998. — С. 672 — 683.

9. Грибанов О. Г., Бочков Ю. А. Использование стекловолокнистых фильтров GF/F (GF/C) для выделения РНК вируса инфекционного бронхита кур II Пробл. инфекц. патологии е.- х. ж-ных: Тез. Докл. конф. Владимир, 1997. — С. 163.

10. Гуненкова Н. К., Чистова З. Я., Сюрин В. Н. Об антигенных вариантах вируса инфекционного бронхита птиц // Вирусн. болезни с,-х. ж-ных: Матер. 1-й Межвузов, вет. вирусол. конф. М., 1970. — 4.2. -С. 121 -122.

11. Данченко Л. К. Изучение некоторых биологических свойств штаммов вируса инфекционного ларинготрахеита кур: Авт. дис. канд. вет. наук, Персиановка. 1968. — 19 с.

12. Диагностика, профилактика и меры борьбы с вирусными, респираторными и малоизученными болезнями птиц в промышленном птицеводстве: Рекомендации// Герман В. В., Бабкин В. Ф., Соколенко Н. Т., Волосянко Е. В. Харьков, 1988. -18 с.

13. Дьяконова Е. В., Шубин В. А. Смешанное течение вирусного бронхита и респираторного микоплазмоза у цыплят II Акт. Вопр. Вет. вирусол.: Матер. Ill Всесоюзн. Вет. Вирусол. конф. М., 1967. — Ч. 2. — С. 201 — 202.

14. Зинковский Ю. В., Колосов С. Н., Дрыгин В. В. Программа построения профиля вариабельности гомологичных последовательностей биополимеров & laquo-SQ-МАХ»- // Всерос. н-пр. конф. :пробл. инфекц. патологии с. -х. ж-ных. Владимир, 1997. — С. 42−44.

15. Котляр П. Ю. Иммуноферментный метод диагностики инфекционного ларинготрахеита птиц: Авт. Дис. канд. вет. наук, Санкт-Петербург. -1995. -18 с.

16. Куриленко А. Н., Крупальник В. Л., Якимчик Б. А. Инфекционный бронхит кур (обзор литературы) // Ветеринария. 1990. — № 8. — С. 36.

17. Куриленко А. Н., Чистова З. Я., Ромахова М. А. и др. Рекомендации по диагностике и профилактике инфекционного бронхита кур // М. ,-1981. -35 с.

18. Луговская Н. Н., Мудрак Н. С., Дрыгин В. В., Борисов А. В. Иммуноферментная тест-система для определения антител к вирусу инфекционного бронхита кур // Роль вет. науки в разв. живот-ва: Матер, меиодун. научно-практ. конф. Алматы, 2000. — С. 141−142.

19. Луговская Н. Н., Мудрак Н. С., Дрыгин В. В., Борисов А. В. Оптимизация условий проведения непрямой реакции ИФА для определения антител к вирусу инфекционного бронхита кур // Пробл. инфекц. патологии с. -х. ж-ных: Тез. докл. конф. Владимир, 1997. — С. 34−35.

20. Мазурина М. Г. Биологические свойства изолятов вируса ИБК // Совр. средства и мет. борьбы с заразными болезнями с. -х. птиц: Сб. науч. тр. Л., 1988. — 4.1. — С. 7−14.

21. Мазурина М. Г., Терюханов А. Б. Патогенность отечественных штаммов вируса инфекционного бронхита кур для эмбрионов и цыплят // Акт. вопр. вет. вирусол.: Тез. Докл. IV Всесоюз. вет. вирусол. конф. Владимир, 1976. — 4.2. — С. 104 — 105.

22. Методические указания по патоморфологической диагностике инфекционных болезней птиц и эмбрионов / МСХ и ПРБ. ААН РБ. ВГАВМ. БелНИИЭВ.- Сост. Прудников B.C., Жаков М. С., Громов И. Н. и др. Минск, 2000. — 32 с.

23. Мисиров З. Г. Одновременное течение инфекционного бронхита кур и пуллороза // Акт. вопр. вет. вирусол.: Тез. Докл. IV Всесоюз. вет. вирусол. конф. Владимир, 1976. — 4.2. — С. 200 — 201.

24. Прокофьева М. Т., Бабкин В. Ф. Биологические свойства вируса инфекционного ларинготрахеита кур II Ветеринария. 1967. -№ 5.- С. 43−45.

25. Сушкова Н. К. Инфекционный ларинготрахеит. Лекция // Мос. гос. акад. вет. мед. и биотехнол. Им. Скрябина. Москва, 2001. -26 с.

26. Терюханов А. Б., Мазурина М. Г. Биологические свойства вируса инфекционного бронхита кур (штамм AM), использованного для приготовления вакцины II Акт. вопр. вет. вирусол.: Тез. докл. IV Всесоюз. вет. вирусол. конф. Владимир, 1976. — Ч. 2. — С. 72−73.

27. Токарских В. В., Мазурина М. Г., Терюханов А. Б. Характеристика изолятов вируса ИБК, выделенных от птиц яичного и мясного направления // Комплекс противоэпизоот. и спец. мероприятий по борьбе с болезнями птиц: Сб. науч. тр. Л., 1990. — С. 73 — 79.

28. Троценко Н. И., Белоусова Р. В., Преображенская Э. А. Практикум по ветеринарной вирусологии // & laquo-Колос»-, Москва. 1999. — С. 114.

29. Цыбанова Т. С., Власов Н. А., Цыдыпов В. Ц. Применение непрямого варианта твердофазного ИФА для выявления антител к вирусу ИЛТ II Вирус, болезни е.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч. практ. конф., Владимир, 17 -21 апр. 1995. — Владимир. — 1995. -С. 265.

30. Чистова З. Я., Гуненкова Н. К., Сюрин В. Н. Серологические исследования при диагностике инфекционного бронхита птиц // Вирусн. болезни с. -х ж-ных: Матер. 1-й Межвуз. вет. вирусол. конф4. 2. -М., 1970. -С. 119−121.

31. Чистова З. Я., Сюрин В. Н. Сравнительное изучение терморезистентности и динамики накопления трех штаммов вируса инфекционного бронхита кур в куриных эмбрионах II Тезисы докл. Всесоюз. межвуз. науч. конф. по вет. вирусол. М., 1973. — 4.1. С. 45.

32. Abbas F.- Andreasen J.R. Comparison of diagnostic tests for infectious laryngotracheitis II Avian Dis. -1996. V. 40., N. 2. — P. 290−295.

33. Abbas F.- Andreasen J.R. jr- Jackwood M.W. Development of a polymerase chain reaction and a nonradioactive DNA probe for infectious laryngotracheitis virus II Avian Dis. -1996. V. 40., N. 1. — P. 56−62.

34. Akira Tanemno, Takashi Honda, Eishi Sakai et al. Immunological properties of the cell-associated live infectious laryngotracheitis virus // J. Vet. Sci. -1990 V. 52, N.4. — P. 827 — 829.

35. Alexander H.S., Nagy E. Polymerase chain reaction to detect infectious laryngotracheitis virus in conjunctival swabs from experimentally infected chickens //Avian Dis. -1997. V. 41. — P. 646 -653.

36. Andersen J.R., Glisson J.R., Goodwin M.A., et al. Studies of infectious laryngotracheitis vaccines: immunity in broilers II Avian Dis. -1989. -V. 33. -P. 516−523.

37. Bagust T. J., Johnson M. A. Avian infectious laryngotracheitis: virus-host interactions in relation to prospects for eradication //Avian Pathol. -1995. -V. 24. -P. 373−391.

38. Beach J.R., Schalm O.W. A filterable virus, distinct from that of laryngotracheitis, the cause of a respiratory disease of chicks II Poult. Sci. 1936. — V. 15. -P. 199−206.

39. Beaudette F.R. Infectious laryngotracheitis II Poult. Sci. 1937. -V. 16. -P. 103 -105.

40. Beaudette F.R., Hudson C.B. Cultivation of the virus of infectious bronchitis IIJ. Am. Vet. Med. Assoc. -1937. V. 90. — P. 51 — 60.

41. Boursnell M.E., Binns M.M., Brown T.D. Sequencing of coronavirus IBV genomic RNA: three open reading frames in the 5' unique region of mRNA D II J. Gen. Virol. 1985. — V. 66. — P. 2253 — 2258.

42. Boursnell M.E., Binns M.M., Foulds I.J., et al. Sequences of the nucleocapsid genes from two strains of avian infectious bronchitis virus II J. Gen. Virol. 1985. — V. 66. — P. 573 — 580.

43. Boursnell M.E., Brown T.D., Binns M.M. Sequence of coronavirus IBV genomic RNA: a 195-base open reading frame encoded by mRNA В II Gene. 1984. — V. 29. — P. 87 — 92.

44. Boursnell M.E., Brown T.D., Binns M.M. Sequence of the membrane protein gene from avian coronavirus IBVII Virus Res. 1984. — V. 1. — P. 303−313.

45. Boursnell M.E., Brown T.D., Foulds I.J. et al. Completion of the sequence of the genome of the coronavirus avian infectious bronchitis virus // J. Gen. 1987. -V. 68. — P. 57 — 77.

46. Bushnell I.D., Brandly C.A. Laryngotracheaitis in chicks // Poultry Sci. 1933. — V. 12. — P. 55 — 60.

47. Brierley I., Digard P., Inglis S.C. Characterization of an efficient coronavirus ribosomal framesshifting signal: requirement for an RNA pseudoknot II Cell. 1989. — V. 57. — P. 537 — 547.

48. Brown T.D., Boursnell M.E. Avian infectious bronchitis virus genomic RNA contains sequence homologies at the intergenic boundaries // Virus Res. 1988. — V.1. — P. 18 — 24.

49. Callison S.A., Jackwood M.W., Hilt D.A. Molecular characterization of infectious bronchitis virus isolates forein to the United States and comparison with United States isolates II Avian Dis. 2001. — V. 45, N. 2. — P. 492 — 499.

50. Capua I., Gough R.E., Manchini M. et al. A «novel» infectious bronchitis strain infecting broiler chickens in Italy // Zentralbl. Veterinarmed. -1994. V. 41. — P. 83 — 89.

51. Cavanagh D. Coronavirus IBV glykopolypeptides: size and their polypeptide motieties and nature of oligosaccharides // J. Gen. Virol. -1983. -V. 64. -P. 1187−1191.

52. Cavanagh D. Coronavirus IBV: futher evidence that the surfase projection are associated with two glycopolypeptides // J. Gen Virol. -1983. V. 64. — P. 1787 — 1787 — 1791.

53. Cavanagh D. Coronavirus IBV: Structural characterization of the spike glycoproteins II J. Gen virol. -1983. -V. 64. P. 2577 — 2583.

54. Cavanagh D. Structural characterization of infectious bronchitis virus glycoproteins II Adv. Exp. Med. Biol. -1984 V. 173. — P. 95 — 108.

55. Cavanagh D. Structural polypeptides of coronavirus infectious bronchitis virus II J. gen. Virol. -1981. V. 53. — P. 93 -103.

56. Cavanagh D., Derbyshire J.H., Davis P. et al. Induction of humoral neutralizing and haemagglutination inhibiting antibodies by the spikeprotein of avian infectious bronchitis virus II Avian Pathol. 1984. — V. 13. -P. 573−583.

57. Cavanagh D., Davis P.J. Sequence analisis of strain of avian infectious bronchitis coronavirus isolated during the 1960s in the U.K. II Arch. Virol. 1992. — V. 130. — P. 471 — 476.

58. Chang P. -C.- Shieh H.K.- Shien J. -H.- Kang S. -W. A homopolymer stretch composed of variable numbers of cytidine residues in the terminal repeats of infectious laryngotracheitis virus //AvianDis. -2000. -V. 44., N.1. -P. 125−131.

59. Clavijo A., Nagy E. Differentiation of infectious laryngotracheitis virus strain by polymerase chain reaction II Avian Dis. 1996. — V. 41. — P. 241 -246.

60. Collins M.S., Alexander D.J. Avian infectious bronchitis virusstructural polypeptides: effect of different conditions of disruption and comparison of different strains and isolates II Arch. Virol. 1980. — V. 63. -P. 239−251.

61. Cook J.K. The classification of new serotypes of infectious bronchitis virus isolated from poultry flocks in Britain between 1981 and 1983II Avian Pathol. 1984. — V. 13. — P. 733 — 741.

62. Cook J. K Poultry vaccine containing infections bronchitis virusserotype// European patent application EP 0 639 640 A 1. 27. 07. 1994.

63. Cook J. К, Huggins M.B. Newly isolated serotypes of infectious bronchitis virus: Their role in disease // Avian Pathol. 1986. — V. 15. — P. 129−138.

64. Cook J.K., Smith H.W., Huggins M.B. Infectious bronchitis immunity: Its study in chickens, experimentally infected with mixtures of infectious bronchitis virus and E. coli // J. Gen. Virol. 1986. — V. 67. — P. 1427 -1434.

65. Cook R.W., Glass Sam.E. Laryngotracheitis eradication program II Poultry adviser. 1998. -V. XXI, N. VIII. — P. 49 — 52.

66. Cover M.S. The early history of infectious laryngotracheitis II Avian Dis. 1996. — V. 40. — P. 494 — 500.

67. Cowen B.S., Hitchner S.B. Serotyping of avian infectious bronchitis viruses by the virus-neutralization test II Avian DIs. 1975. — V. 19. — P. 583 — 595.

68. Derbyshire J.H., Assessment of cross-immunity in chicken to strains of infectious bronchitis virus using tracheal organ cultures II Avian Pathol. 1979. — V. 9. -P. 179−183.

69. Darbyshire J.H., Rowell J.G., Cook J.K. et al. Taxonomic studies on strains of avian infectious bronchitis virus using neutralization test in tracheal organ cultures // Arch. Virol. 1979. — V. 61. — P. 227 — 238.

70. Dawson P. S., Gough R.E. Antigenic variation in strains of avian infectious bronchitis virus II Arch. Fur die Gesampte Virusforsch-1971 -V. 34. P. 32 — 39.

71. Fuchs В.- Boddecker G.- Bulow V.v. Vergleichende serologische Untersuchungen uber Methoden zum Nachweis von Antikorpern bei der infektiosen Laryngotracheitis (ILT) der Huhner // Berl. u. munch, tierarztl. Wschr. 1985.- T. 98., N.8. — P. 261−266.

72. Fuchs W, Mettenleiter T.C.J. DNA sequence of the UL6 to UL20 genes of infectious laryngotracheitis virus and characterization of the UL10 gene product as a nonglycosylated and nonessential virion protein //Gen. Virol. 1999. -V. 80, N.8.- P. 2173−2182.

73. Fuchs W., Ziemann K., Teifke J.P. et al. The non-essential UL50 gene avian infectious laryngotracheitis virus encoded a functional dUTPase which is not a virulence factor // J. of Gen. Virol. 2000. — V. 81.- P. 627 638.

74. Garcia M, Riblet S.M. Characterization of infectious laryngotracheitis virus isolates: demonstration of viral subpopulations within vaccine preparations// Avian Dis. 2001. — V. 45, N.3. — P. 558−566.

75. Gelb J., Keller C.L., Nix W.A. et al. Antigenic and S1 genomic characterization of the Delaware variant serotype of infectious bronchitis virus II Avian Dis. 1997. — V. 41. — p. 661 — 669.

76. Gelb J., Ladman B.S., Tamayo M. et al. Novel infectious bronchitis virus S1 genotypes in Mexico 1998 1999 // Avian. Dis. — 2001. — V. 45, N.4. -P. 1060−1063.

77. Gelb J., Wolff J.B., Moran C.A. Variant serotypes of infectious bronchitis virus isolated from commercial layer and broiler chickens II Avian Dis. 1991. — V. 35. — P. 82 — 87.

78. Goodwin M.A., Smeltzer M.A., Brown J. et al. Comparison of histopathology to the direct immunofluorescent antibody test for the diagnosis of infectious laryngotracheitis In chickens II Avian Dis. 1991. -V. 35. — P. 389 — 391.

79. Gough R.E., Randall C.J., Dagless M. et al. A «new» strain of infectious bronchitis virus infecting domestic fowl in Great Britain II Vet. Rec. 1992. — V. 130. — P. 493 — 494.

80. Granzow H., Klupp B.G., Fuchs W. et al. Egress of alphaherpesviruses: comparative ultrastructural study II J. of Virol. 2001.- Apr. P. 3675 — 3684.

81. Guy J.S., Barnes H.J., Morgan L.M. Virulence of infectious laryngotracheitis viruses: comparison of modified-live vaccine viruses and North Carolina field isolates II Avian Dis. -1990. V. 34. — P. 106 -113.

82. Han M.G., Kim S.J. Analysis of Korean strains of infectious laryngotracheitis virus by nucleotide sequences and restriction fragment length polymorphism II Vet. Microbiol. 2001. — V. 83. — P. 321 — 331.

83. Han M. G, Kim S.J. Efficacy of live virus vaccines against infectious laryngotracheitis assessed by polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism // Avian Dis.- 2003. -V. 47, N. 2. P. 26 171.

84. Han M.G., Kweon C.H., Mo I.P., Kim S.J. Pathogenicity and vaccine efficacy of a thymidine kinase gene deleted infectious laryngotracheitis virus expressing the green fluorescent protein gen elf Arch. Virol. 2002-V. 147, N.5. — P. 1017−1031.

85. Hilbink F.W., van Roozelaar D.J. A microtitration and neutralization test for infectious laringitracheitis virus. Their reproducibility and the effect of various test conditions // Tijdschr Diergeneeskd. 1988. — V. 113, N. 2. -P. 61 -61.

86. Hofstad M.S., Antigenic differences among isolates of avian infectious bronchitis virus // Am. J. Vet. Res. 1958. — V. 19. — P. 740 -743.

87. Hughes C. S., Jones R.C. Comparison of cultural methods for primary isolation of infectious laryngotracheitis virus from field materials // Avian Pathol. 1988. — V. 17. — P. 295 — 303.

88. Humberd J., Garcia M., Riblet S.M., Detection of infectious laryngotracheitis virus in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues by nested polymerase chain reaction // Avian Dis. 2002. — V. 46. — P. 64 -74.

89. Ignatovic J. f Ashton D.F., Reece R. et al. Pathogenicity of Australian strains of avian infectious bronchitis virus // J. Сотр. Pathol. 2002. — V. 126, N. 2−3. -P. 115−123.

90. Ignjatovic J., Sapats S. Avian infectious bronchitis virus // Rev. Sci. Tech. 2000. — V. 19, № 2. — P. 493−508.

91. Jackwood M.W., Yousef N.M., Hilt D.A. Furher development and use of a molecular serotype identification test for infectious bronchitis virus // Avian Dis. 1997. -V. 41. — P. 105- 110.

92. Jang H.K., Ono M., Kim T. J. et al. The genetic organization and transcriptional analysis of the short unique region in the genome of nononcogenic Marek’s disease virus serotype 2 II Virus Res. -1998. V. 58, N. 1−2. -P. 137−147.

93. Johnson M.A., Tyack S.G. Molecular evolution of infectious laryngotracheitis virus (ILTV-gallid herpesvirus 1): An ancient example of the Alphaherpesviridae? II Vet. Microbiol. -1995. -V. 46. -P. 221 231.

94. Johnson M.A., Tyack S.G., Prideaux C. et al. Nucleotide sequence of infectious laryngotracheitis virus (gallid herpesvirus 1) ICP4 gene // Virus Research. -1995. V. 35. — P. 193 — 204.

95. Johnson M.A., Prideaux C., Kongsuwan S.G. et al. ICP27 immediate early gene, glycoprotein К (gK) and DNA helicase homologues of infectious laryngotracheitis virus (gallid herpesvirus 1) SA-2 strain II Arch. Virol. 1995. — V. 140. — P. 623 — 634.

96. Johnson R.B., Marquardt W.W. The neutralizing characteristics of strains of infectious bronchitis virus as measured by the constant virus variable serum method in chicken tracheal cultures // vian Dis. 1975. — V. 19. -P. 82−90.

97. Johnson R.B., Marquardt W.W., Newman J.A. A new serotype of infectious bronchitis virus responsible for respiratory disease in Arkansas broiler flocks // Avian Dis. 1973. — V. 17. — P. 518 — 523.

98. Jordan F.T.W. Diagnosis of infectious laryngotracheitis by chick embryo inoculation II J. Сотр. Path. 1964. — V. 74. — P. 119 — 128.

99. Jordan F.T.W., Chubb R.C. The agar gel diffusion technique in the diagnosis of infectious laryngo-tracheitis (I.L.T.) and its differentiation from fowl pox II Res. Vet. Sci. 1962. — V. 3. — P. 245 — 255.

100. Kaleta E.F., Redmann Т., Redmann U. H., Frese K. Zum nachiveis der latenz des attenuierten virus des infektiosen laryngotracheitis deshuknes im trigeminus-ganglion II Dtsch. Tierarztl. Wichr. 1986. — V. 93. -P. 40−42.

101. Keller C.L., Reed K.L., Nix W.A. et al. Serotype identification of avian infectious bronchitis virus by RT-PCR of the peplomer (S1) gene II Avian Dis. 1998. — V. 42. — P. 275 — 284.

102. Keller C.L., Klngsley O.H., Adams Burton C.R. Identification of the Thymidine Kinase Gene of infectious laryngotracheitis virus II Avian Dis. -1991. -V. 35. -P. 920−929.

103. King D.J., Hopkins S.R. Rapid serotyping of infectious bronchitis virus isolates with the hemagglutinatlon-inhibition test II Avian Dis. 1984. -V. 28. -P. 727−733.

104. Kingsley D.H., Hazel J.W., Keeler C.L. identification and characterization of the laryngotracheitis virus glycoprotein С gene // Virilogy. 1994. — V. 203. — P. 336 — 343.

105. Koch G., Hartog A., Kant A. et al. Antigenic domains of the peplomer protein of avian infectious bronchitis virus: correlation with biological functions II J. Gen. Virol. 1990. — V. 71. — P. 1929 — 1935.

106. Kongsuwan K., Johnson MA., Prideaux C.T., Sheppard M. Identification of an infectious laryngotracheitis virus gene encoding an immunogenic protein with a predicted Mr of 32 kilodaitons II Virus Res. -1993. -V. 29. -P. 125−140.

107. Kotiw M., Sheppard M., May J.T., Wilks C.R. Differentiation between virulent and avirulent strains of infectious laryngotracheitis virus by DNA: DNA hybridization using a cloned DNA marker II Vet. Microbiol. -1986. -V. 11. -P. 319−330.

108. Kotiw M., Wilks C.R., May J.T. The effect of serial in vivo passage on the expression of virulence and DNA stability of an infectiouslaryngotracheitis virus strain of low virulence // Vet. Microbiol. 1995. -V. 45. — P. 71 — 80.

109. Kusters J.G., Niesters H.G., Lenstra J.A. et al. Phylogeny of antigenic variants of avian coronavirus IBV // Virology/ 1989. — V. 169. -P. 217−221.

110. Lee CW, Brown C, Hilt DA, Jackwood MW. Nephropathogenesis of chickens experimentally infected with various strains of infectious bronchitis virus // J. Vet. Med. Sci.- 2004. -V. 66, N. 7. P. 835−840.

111. Lee C.W., Jackwood M.W. Origin and evolution of Georgia 98 (GA98), a new serotype of avian infectious bronchitis virus // Virus Res. -2001. V. 28, N. 80 (1−2). — P. 33 — 39.

112. Lee CW, Hilt DA, Jackwood MW. Typing of field isolates of infectious bronchitis virus based on the sequence of the hypervariable region in the S1 gene // J. Vet. Diagn. Invest.- 2003. V. 15, N.4. — P. 344−348.

113. Lee S.K., Sung H.W., Kwon H.M. S1 glycoprotein gene analysis of infectious bronchitis viruses isolated in Korea // Arch. Virol.- 2004. V. 149, N.3. -P: 481−494.

114. Leib D.A.- Bradbury J.M.- Gaskell R.M. Restriction endonuclease patterns of some European and American isolates of avian infectious laryngotracheitis virus // Avian Dis. -1986. T. 30., N.4. -P. 835−837.

115. Leib D.A.- Bradbury J.M.- Hart C.A.- McCarthy K. Genome isomerism in two alphaherpesviruses: Herpesvirus saimiri-1 (Herpesvirus tamarinus) and avian infectious laryngotracheitis virus И Arch. Virol. -1987. T. 93., N. 3−4. — P. 287−294.

116. Linares J.A., Bickford A.A., Cooper G.L. et al. An outbreak of infectious laryngotracheitis in California Broilers // Avian Dis. -1994- V. 38. -P. 188−192.

117. Liu S., Kong X. A new genotype of nephropathogenic infectious bronchitis virus circulating in vaccinated and non-vaccinated flocks in China // Avian Path. 2004. — V. 33, N.3. — P. 321 — 327.

118. MacNaughton M.R., Davies H.A., Nermut M.V. Ribonucleoprotein-like structures from coronavirus particles II J. Gen. Virol. -1978. -V. 39. P. 545 — 549.

119. MacNaughton M.R., Madge M.N. The polypeptide composition of avian infectious bronchitis virus particles // Arch. Virol. 1977. — V. 55. -P. 47 — 54.

120. Mase M, Tsukamoto K, Imai K, Yamaguchi S. Phylogenetic analysis of avian infectious bronchitis virus strains isolated in Japan// Arch. Virol. -2004. July15 Epub ahead of print/.

121. Meulemans G., Halen P. A comparison of three methods of diagnosis of infectious laryngotracheitis // Avian Path. 1978. — V.7. — P. 433−436.

122. Modrow S., Falke D. Moleqular virology // Heidelberg Berlin -Oxford. — 1997. -533 P.

123. Mondal S.P., Lucio-Martinez В., Nagi S.A. Isolation and characterization of a novel antigenic subtype of infectious bronchitis virus serotype DE 072 // Avian Dis. 2001. — V. 45, N. 4.- P. 1054 — 1059.

124. Moore K.M., Jackwood M.W., Hilt D.A. Identification of amino acids involved in a serotype and neutralization specific epitope within the S1subunit of avian infectious bronchitis virus // Arch. Virol. 1997. — V. 142. -P. 2249 — 2256.

125. Nagy E. Detection of infectious laryngotracheitis virus infected cells with cloned DNA probes II Can J. Vet. Res. -1992. V. 56. — P. 34 — 40.

126. Nagy E., Lomniczi B. Polypeptide patterns of infectious bronchitis serotypes fall in two categiries II Arch. Virol. 1979. — V. 61. — P. 341 -345.

127. Nakamura K., Imai KM Tanimura N. Comparison of the effects of infectious bronchitis and infectious laryngotracheitis on the chicken respiratory tract // J. Сотр. Pathol. -1996. -V. 114, N.1. -P. 11 -21.

128. Nielsen O. L., Handberg K. J., Jorgensen P.H. In situ hybridization for the detection of infectious laryngotracheitis virus in sections of trachea from experimentally infected chickens II Acta Vet. Scand. 1998. — V. 39, N.4. -P. 415- 421.

129. Parsons D., Ellis M.M., Cavanagh D., Cook J.K. Characterization of an infectious bronchitis virus isolated from vaccinated broiler breeder flocks // Vet. Rec. 1992. — V. 131. — P. 408 — 411.

130. Picault J.P., Bennejean G., Drouin P. A new pathogenic avian infectious bronchitis virus isolated in France // In: Curent topics in vet. Med. And animal science. -1986. P. 122 — 127.

131. Poulsen D.J., Adams Burton C.R., Brian J.J. et al. Identification of the infectious laryngotracheitis virus glycoprotein gB gene by the polymerase chain reaction II Virus genes. 1991. — V. 5., N.4. — P. 335 -347.

132. Poulsent D. J., Keeler C. L. Characterization of the assembly and processing of infectious laryngotracheitis virus glycoprotein В // J. of Gen. Virol. 1997. — V. 78. — P. 2945 — 2951.

133. Raggi L.G., Gomes L. Two new isolants of infectious bronchitis virus with polyvalent immunogenicity II Avian Dis. 1975. — V. 19. — P. 323 -328.

134. Sander J.E., Thayer S.G. Evaluation of ELISA titers to infectious laryngotracheitis // Avian Dis. 1997. — V. 41, N. 2. — P. 429 — 432.

135. Sapats S.I., Ashton F., Wright P.J. et al. Sequence analysis of the S1 glycoprotein of infectious bronchitis viruses: identification of a novel genotypic group in Australia // J. Gen. Virol. -1996. V. 77. — P. 413 — 418.

136. Sayed A.M. Infectious laryngotracheitis disease in broiler in Assiut governorate II Assiut veter. med.J. -2000. -V. 42., N. 84. -P. 264−271.

137. Schikora BM, Shih LM, Hietala SK. Genetic diversity of avian infectious bronchitis virus California variants isolated between 1988 and 2001 based on the S1 subunit of the spike glycoprotein II Arch. Virol. 2003. -V. 148, N. 1- P. 115−136.

138. Schnitzlein W.M., Radzevicius G., Iripathy D.N. Proprgation of infectious laryngotracheitis virus in an avian liver cell line. // Avian Dis. -1994. V. 38. — P. 211−217.

139. Schnitzlein W.M., Wimans R. f Ellsworth S., Tripathy D.N. Generation of thymidine-kinase-deficient mutants of infectious laryngotracheitis virus // Virology. 1995. — V. 209, N.2. — P. 304 — 314.

140. Sellers HS, Garcia M, Glisson JR, Brown TP, Sander JS, Guy JS. Mild infectious laryngotracheitis in broilers in the southeast // Avian Dis. 2004. -V. 48, N.2. P. :430−436.

141. Siddell S.G., Wege H., ter Meulen V. The biology of coronavirus // J. Gen. virol. 1983. — V. 64. — P. 761 — 776.

142. Smati R., Silim A., Guertin C. et al. Molecular characterization of three new avian infectious bronchitis virus (IBV) strains isolated in Quebec II Virus genes. 2002. — V. 25, N. 1. — P. 85 — 93.

143. Smith H.W., Cook J.K., Parsell Z. E. The experimental infection of chickens with mixtures of infectious bronchitis virus and E. coli II J. Gen. Virol. 1985. -V. 66. — P. 777 — 786.

144. Shapouri M.R., Mayahi M, Assasi K, Charkhkar S. A survey of the prevalence of infectious bronchitis virus type 4/91 in Iran// Acta. Vet. Hung.- 2004. -V. 52, N. 2. P. 163−166.

145. Shieh H. K, Shien J. H, Chou H.Y. et al. Complete nucleotide sequences of S1 and N genes of infectious bronchitis virus isolated in Japan and Taiwan// J. Vet. Med. Sci.- 2004. V. 66, N.5. — P. 555−558.

146. Spackman D., Cameron I.R. Isolation of infectious bronchitis from pheasants II Vet. Rec. 1983. — V. 113. — P. 354 — 355.

147. Stern D.E., Kennedy S.I. Coronavirus multiplication strategy. I. Identification and characterization of virus specified RNA // J. Virol. 1980. — V. 34. — P. 665 — 574.

148. Stern D.E., Kennedy S.I. Coronavirus multiplication strategy. ll. Mapping the avian infectious bronchitis virus intracellular RNA species to the genome II J. Virol. -1980. V. 36. — P. 440 — 449.

149. Stern D.E., Sefton B.M. Coronavirus multiplication: the location of the genes coding for the virion proteins on the avian infectious bronchitis virus genome II J. Virol. -1984. V. 44. — P. 804 — 812.

150. Stern D.E., Sefton B.M. Coronavirus proteins: Biogenesis of avian infectious bronchitis virus virion proteins // J. Virol. -1982.- V. 44. P. 794 -803.

151. Stern D.E., Sefton B.M. Coronavirus proteins: Structure and functions of the oligosaccharides of the avian infectious bronchitis virus glycoproteins // J. Virol. -1982. V. 44. — P. 804 — 812.

152. Sturman L.S., Holmes K.V. Characterization of a coronavirus. II. Glycoproteins of the viral envelope: Tryptic peptide analysis II Virology. -1977. -V. 77. -P. 650−660.

153. Sturman L.S., Holmes K.V. The molecular biology of coronaviruses // Adv. Virus Res. 1983. -V. 28. P. 35−112.

154. Suzutani Т. The relationship between gene function and virulence in alphaherpesviruses II Nippon Rinsho. 2000. — V. 58, N. 4. — P. 801 — 806.

155. Tantawi H.H., El Batrawi A.M., Bastami M.A. et al. Avian infectious laryngo-tracheitis In Egipet. I. Epidemiology, virus isolation and identification II Vet. Res. Commun. 1983. — V. 6, N.4. — P. 281 — 287.

156. Thompson R.L., Cook M.L., Devi-Rao G.B. et al. Functional and molecular analyses of the avirulent wild-type herpes simplex virus type 1 strain KOSII J. Virol. -1986. V. 51. — P. 203 — 211.

157. Thomson B.J., Martin M.E.D., Nicholas J. The molecular and cellular biology of human herpesvirus-6 II Rev. Med. Virol. 1991. — V.1. — P. 89 -99.

158. Timurkaan N., Yilmaz F., Bulut H. et al. Pathological and immunohistochemical findings in broilers inoculated with a low virulent strain of infectious laryngotracheitis virus II J. Vet. Sci. 2003. — V.4., N.2. -P. 175−180.

159. Trist H.M., Tyack S.G., Johnson M.A. et al. Comparision of the genomic short regions of a vaccine strain (SA-2) and a virulent strain (CSW-1) of infectious laryngotracheitis virus (Gallic! herpesvirus 1) // Avian Dis. -1996. -V. 40, N. 1. -P. 130−139.

160. Vander Кор M. Infectious laryngotracheitis in commercial broiler chickens II Can. Vet. J. 1993. -V. 35. — P. 185. 181. van Kammen A., Spradbrow. Rapid diagnosis of some Avian Virus Disease II Avian Dis. -1976. V. 20., N. 4. — P. 748 — 751.

161. Veits J, Kollner B, Teifke J.P. et al. Isolation and characterization of monoclonal antibodies against structural proteins of infectious laryngotracheitis virus II Avian Dis.- 2003. -V. 47, N. 2. P. 330−342.

162. Veits J., Mettenleiter T.C., Fuchs W. Five unique open reading frames of infectious laryngotracheitis virus are expressed during infection but are dispensable for virus replication in cell culture // J. of Gen. Virol. -2003. V. 83. — P. 1415 — 1425.

163. VogtlinA., Bruckner L., Ottiger H. P. Use of polymerase chain reaction (PCR) for the detection of vaccine contamination by infectious laryngitracheitis virus // Vaccine. — 1999. — V. 17. — P. 2501 — 2506.

164. Wadey C.N., Faragher J.T. Australian infectious bronchitis viruses:1. entification of nine subtypes by a neutralization test // Res. Vet. Sci. -1981. -V. 30. -P. 70−74.

165. Wang С. H., Huang Y.C. Relationship between serotypes and genotypes based on the hypervariable region of the S1 gene of infectious bronchitis virus // Arch. Virol. 2000. — V. 145. — P. 291 — 300.

166. Wang H.N., Wu Q.Z., Huang Y. et al. Isolation and identification of infectious bronchitis virus from chicken in Sichuan, China // Avian Dis. щ 1997. V. 41. — P. 279 — 282.

167. Wieliczko A, Mazurkiewicz M, Piasecki T, Kuszczynski T. The clinical course of the Infectious Laryngotracheitis (ILT) field case in hens and estimation of immunoprophylaxis efficiency // Pol. J. Vet. Sci.- 2004. V. 7, N.2. — P. 143−147.

168. Wild M.A., Cook S., Cochran M. A genomic map of infectious laringotracheitis virus and the sequence and organization of genes present in the unique short and flanking regions II Virus Genes. -1996. -V. 12., N. 2-P. 107−116.

169. Wilks С. R. t Kogan V.G. An immunofluorescence diagnostic test for avian infectious laryngotracheitis // Australian Vet. J. 1979. — V. 55. — P. 385 — 388.

170. Yilmaz F, Timurkaan N, Bulut H. Detection of infectious laryngotracheitis virus in trigeminal ganglia by avidin-biotin complex method in chickens: short communication // Acta Vet. Hung.- 2004. V. 52, N.2. — P. 167−71.

171. Yu L., Jiang Y., Low S. et al. Characterization of three infectious bronchitis virus isolates from China associated with proventriculus in vaccinated chickens II Avian. Dis. 2001. — V. 45, N. 2. — P. 416 — 424.

172. York J.J., Fahey K.J. Diagnosis of infectious laryngotracheitis using a monoclonal antibody ELISAII Avian Path. -1988. P. 173 — 182.

173. Zanaty K.E.- Ahmed Y.F. Natural outbreak of infectious laryngotracheitis in broiler chickens in Saudia Arabia // Assiut veter. med.J. 1995. — V. 33., N. 66. — P. 191−198.

174. Zanella A, Lavazza A, Marchi R. et al. Avian infectious bronchitis: characterization of new isolates from Italy II Avian Dis. 2003. — V. 47, N.1. — P. 180−185.

175. Zellen G.K., Weber L.J., Martin S.W. Infectious laryngotracheitis in the Niagara Peninsula II Can. Vet. J. -1984. -V. 25. P. 75 — 77.

176. Ziegler A.F., Ladman B.S., Dunn P.A. et al. Nephropathogenic infectious bronchitis in Pennsylvania chickens 1997−2000 II Avian Dis. -2002. V. 46, N.4. -P. 847−858.

177. Ziemann К., Mettenleiter С. Т., Fuchs W. Gene arrangement within the unique long genome region of infectious laryngotracheitis virus is distinct from that of other alphaherpesviruses // J. of Virology. Jan. -1998.- P. 847 — 852.

178. Zhou J.Y., Zhang D.Y., Ye J.X., Cheng L.Q. Characterization of an avian infectious bronchitis virus isolated in China from chickens with nephritis // J. Vet. Med. B. Infect. Dis. Vet. Public. Health.- 2004. V. 51, N. 4. — P. 147−152.

Заполнить форму текущей работой