Разработка технологической схемы получения н-бутанола с клостридиями

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Пищевая промышленность


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

Химия растительного сырья. 2013. № 3. С. 221−238.
DOI: 10. 14 258/jcprm. 1 303 221
Технологии
УДК 579. 222. 7:2:57. 083. 134
РАЗРАБОТКА ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ СХЕМЫ ПОЛУЧЕНИЯ н-БУТАНОЛА С КЛОСТРИДИЯМИ
© В. И. Сушкова, С. В. Яроцкий, A.B. Сухоженко
ГосНИИ генетики и селекции промышленных микроорганизмов, 1-йДорожный проезд, 1, Москва, 117 545 (Россия), e-mail: sushkovaval@mail. ru
С целью разработки технологической схемы производства к-бутанола микробиологическим синтезом, обеспечивающим выход суммы растворителей не менее 40% от условного крахмала в субстрате, проведена интенсификация процесса ацетоно-бутиловой ферментации путем получения новых штаммов Clostridium acetobutylicum (СВ 6−1) ВКПМ В-10 289 и (СВ-2) ВКПМ В-10 290 и оптимизации состава питательных крахмалсодержащих субстратов с выходом суммы растворителей 39−53% от условного крахмала в субстрате.
Разработана технологическая схема производства к-бутанола, основанная на комплексной переработке целлю-лозо- и пентозансодержащего сырья, отрубей, мелассы и предусматривающая следующие варианты: 1) биосинтез к-бутанола Cl. acetobutylicum СВ-2 ВКПМ В-10 290 из ржаной муки с использованием культуральной жидкости Cl. tyro-butyricum- 2) двухэтапный процесс экстракции к-бутанола из культуральной жидкости при ацетоно-бутиловой непрерывной ферментации и по ее завершению- 3) получение н-бутанола по традиционной технологии с исследуемыми штаммами или симбиотическим консорциумом двух бактерий Cl. tyrobutyricum и Cl. acetobutylicum с и без экстракции к-бутанола из отработанной культуральной жидкости. Выход суммы растворителей следующий: 1 — до 40% от условного крахмала в субстрате- 2 — 34,5% - 3 — до 43% от сброженных углеводов.
Ключевые слава: ферментативный гидролизат, кукурузная кочерыжка, отруби, меласса, ржаная мука, штамм, экстрактивная ферментация, олеиловый спирт, продуктивность, выход, масляная кислота, к-бутанол, масляно-кислое брожение, ацетоно-бутиловая ферментация.
Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации в рамках межгосударственной целевой программы ЕврАзЭС «Инновационные биотехнологии», ГК№ 16. М04. 12. 0017.
Введение
Заводы по производству бпобутанола по типовой технологии работали во многих странах мира, включая Россию, Соединенные Штаты Америки, Великобританию, Китай, Южную Африку и Индию. Появление на рынке более дешевого по стоимости бутанола из нефтепродуктов привело к закрытию произ -водств биобутанола. Но повышающиеся цены на нефть и стремление к укреплению национальной безопасности за рубежом явились стимулом к продолжению исследований по совершенствованию технологии производства н-биобутанола из возобновляемых видов растительного сырья. В настоящее время созданы пилотные заводы в США, Англии, Австрии, Китае.
Конкурентоспособность производства н-бутанола микробиологическим синтезом в основном зависит от эффективности процесса ацетоно-бутиловой ферментации. Продукты биосинтеза н-бутанол, этанол, ацетон, масляная и уксусная кислоты и другое являются токсичными по отношению к продуценту Clostridium
СушковаВалентина Ивановна — ведущий научный (а) acetobutylicum (критические концентрации н-
сотрудник, доктор биологических наук, доценг, бутанола — 12−13 г/л [1] и масляной кислоты — 6 г/л
тел.: (495) 315−04−65- факс: (495) 315−05−01
e-mail'- sushkovaval@mail ru LZJ) — ло снижает технико-экономические показатели
Яроцкий СергейВикторович — заведующий процесса ферментации и производства н-бутанола в
лабораторией, доктор биологических наук, целом. Выходы продуктов биосинтеза (н-бутанола —
тел.: (495) 928−37−59, e-mail: yarotsky@senetika. ru «_ «««. ««. «__.
«. «», «20−22%, суммы растворителей — 35−37% от условного
СухоженкоАлексеиВлаоимирович — научный
сотрудник, e-mail: suhozenko_av@fastmail. net крахмала в питательном субстрате) значительно ниже
Автор, с которым следует вести переписку.
теоретических выходов (н-бутанола 26,6 и суммы растворителей 43,24% от сброженного крахмала) [1, 3]. По этим причинам при получении н-бутанола микробиологическим синтезом имеют место высокие затраты на углеводсодержащее сырье и теплоэнергоресурсы [3].
За рубежом в производстве н-бутанола используют следующие штаммы: Cl. acetobutylicum P262 (также известный как Clostridium saccharobutylicum) [4, 5]- Cl. acetobutylicum NRRL B643, ATCC 824, B18, Cl. beijerinckii 8052 [6]- BA 101, [7−15]- EA 2018 [14]- LMD 27,6- P260 [16]. Еще большее количество штаммов получено и исследовано в лабораторных условиях, в том числе Cl. acetobutylicum ВКПМ В-4786 [17, 18]- ВКПМ В-5359 (S-3716) [19]- DSM 1731 [2] SoLRH (ptAAD) [16]- Cl. saccharoperbmylacetonicum DSM 14 923 [2]- N1−4, [20]- Cl. beijerinckii NCIMB 8052 [21]- JCM 1390 [22]- CCM-6182 [23] Cl. pasteurianum NRRL B-592 [23] и др. Максимальные показатели концентраций н-бутанола, суммы растворителей (г/дм3) и продуктивности по сумме растворителей (г/дм3/ч) имеют известные штаммы Cl. acetobutylicum № 6 (12,3- 19,2- 0,36), ВКПМ В-4786 (11,0- 20,0- 0,37) [18]- SoLRH (ptAAD) (н-бутанол 17,6) [16]- Cl. beijerinckii BA101 (15,8−19,6- 24,2−26,1- 0,34) [4, 8, 11, 24] иР 260 (суммарастворителей 25- 0,31−0,36) [16, 25].
Для культивирования этих штаммов в лабораторных условиях используют следующие синтетические среды: MSS [17], Р2, [14,15,17,20,25] и TYA [20]. Для роста клостридий и биосинтеза ими растворителей требуются как макро-, микроэлементы, так и ростовые вещества. Источником всех этих компонентов является крахмалсодержащее сырье (зерносырье и картофель) [1].
Максимальные выходы н-бутанола и суммы растворителей имеют место в процессе ацетоно-бутилового брожения крахмала зерносырья и мальтодекстрин [1, 6−10, 17, 18, 26, 27]. Наш экономический анализ показал, что стоимость субстратов из муки зерносырья составляет около 50% от себестоимости суммы растворителей [3]. С целью снижения расхода муки зерносырья для приготовления питательных субстратов чаще используют смесь различных видов сырья.
В промышленном производстве СССР н-бутанола микробиологическим синтезом по традиционной технологии использовали смешанный субстрат следующего состава: обдирная мука (40−80%), свекловичная меласса (18,8−61,2%) и нейтрализованные гидролизаты отходов от переработки растительного сельскохозяйственного сырья (кукурузной кочерыжки, подсолнечной лузги, конопляной костры) (3,5−6,3%). При содержании в субстрате 5,9% гидролизата и 22,3% мелассы от общего количества условного крахмала выход растворителей с 1 т условного крахмала составлял 362,3 кг (36,2%), в том числе н-бутанола -210,3 кг (21,0%). Процесс брожения длился 60−72 ч [1].
Проверенно значительное количество более дешевого возобновляемого углеводсодержащего сырья, чем обдирная ржаная мука: сахарсодержащие (свекла, соевая, свекольная мелассы- патоки) — крахмалсо-держащие (мальтодекстрины, зерно, пшеничные и рисовые отруби, саго, топиока, картофель) — пентозансо-держащие (кукурузная кочерыжка, багасса, плодоовощные отходы) — целлюлозосодержащие материалы (солома пшеницы, ячменя, овса и риса, пожнивные остатки соевых бобов, макулатура, скорлупа ореха, высушенная зерновая послеспиртовая барда) и другие (молочная сыворотка, глицерин) [1−36].
Совмещение процессов ацетоно-бутиловой ферментации с методами выделения н-бутанола позволяет перерабатывать высокие концентрации углеводов в питательном субстрате (400−500 г/л), получать более высокие концентрации н-бутанола в продуктах выделения растворителей 20−45 г/л и существенно экономить теплоэнергоносители [4−6]. Известна технология экстрактивной ферментации в две ступени в биореакторах с олеиловым спиртом и рециркуляцией культуральной жидкости и биомассы клостридий, обеспечивающая концентрацию н-бутанола в экстрагенте 35−37 г/дм3 [37−39]. Но она не позволяет полностью извлечь н-бутанол из культуральной жидкости. Кроме того, невозможно осуществить полную ее рециркуляцию, так как будут накапливаться не целевые продукты метаболизма и снижать выход н-бутанола.
Известна двухстадийная технология получения бутанола с двумя культурами, на первой стадии с Cl. tyrobutyricum и на второй — Cl. acetobutylicum [4]. В данном процессе выше выход суммы растворителей на 2% (45,66%) и есть возможность получать в основном н-бутанол с минимальным количеством сора-створителей. Ramey D. удалось достигнуть высокого выхода н-бутанола 34% [40] и содержания бутанола в составе растворителей — 80% на глюкозе при использовании данного метода с иммобилизованными биомассами бактерий и совмещенного с процессом выделения н-бутанола [4, 40].
Мы провели сравнительный анализ эффективности использования штамма Clostridium beijerinckii BA 101 для ацетонобутанольного брожения крахмалсодержащих сред, смешанных субстратов, глюкозы и
олигосахаров. Был сделан вывод, что на низкомолекулярных субстратах (глюкоза, сахароза мелассы, маль-тодекстрины) образуется меньше соиродуктов по отношению к н-бутанолу [8−11].
Таким образом, основными направлениями интенсификации процесса ацетоно-бутилового брожения и снижения себестоимости производства н-бутанола в целом являются:
1) получение высокопродуктивного штамма бактерий — продуцента н-бутанола, толерантного к продуктам биосинтеза — масляной кислоте и н-бутанолу-
2) оптимизация состава питательного субстрата и использование в качестве дополнительного субстрата масляной кислоты-
3) использование непрерывного процесса ацетоно-бутиловой ферментации совмещенного с одним из методов выделения н-бутанола из культуральной жидкости.
Цель данной работы — разработать технологическую схему получения н-бутанола микробиологическим синтезом, обеспечивающим выход суммы растворителей не менее 40% от условного крахмала в субстрате.
Для достижения данной цели необходимо было решить следующие задачи:
— получить более эффективный штамм бактерий Cl. acetobutylicum-
— оптимизировать состав питательного субстрата с дополнительным источником питания масляной кислотой-
— разработать технологию экстрактивной ацетно-бутиловой ферментации.
Экспериментальная часть
Объекты исследований. Для исследований были использованы штаммы бактерий ацетоно-бутилового брожения: Clostridium (Cl.) acetobutylicum ВКПМ В-4786 (коллекция музея культур ФГУП ГосНИИ генетики и селекции промышленных штаммов микроорганизмов), № 6 и № 7 (коллекция МГУ) и штаммы маслянокислого брожения Cl. tyrobutricum ВКПМ В-9615, В-10 406, Cl. butyricum ВКПМ В-9619 и Cl. butyricum ВКПМ В-9617 (коллекция музея культур ФГУП ГосНИИ генетики и селекции промышленных штаммов микроорганизмов).
С использованием УФ-облучения суспензий штаммов Cl. acetobutylicum № 6 и ВКПМ В-4786 с последующим отбором получено два штамма с повышенным уровнем биосинтеза н-бутанола СВ 6−1 и СВ-2 соответственно.
Полученные штаммы адаптированы к стерильным фугатам культуральных жидкостей следующих штам -мов маслянокислых бактерий: Cl. tyrobutricum ВКПМ В-9615, ВКПМ В-10 406 и Cl. butyricum ВКПМ В-9619.
Данные штаммы депонированы во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) как Cl. acetobutylicum ВКПМ В-10 289 и ВКПМ В-10 290 соответственно.
Штаммы бактерий ацетоно-бутилового брожения Cl. acetobutylicum являются облигатными анаэробами, палочковидными, гетеротрофными микроорганизмами [1]. Бактерии имеют клостридиальную форму спорообразования, каждая вегетативная клетка может образовывать только одну спору. Споры могут переносить нагревание до 65 °C в течение 40 дней, легко выдерживает нагревание до 80 °C в течение 1030 мин, гибнут при нагревании до 100 °C в течение 4 мин.
Молодые вегетативные клетки ацетоно-бутиловых бактерий по Граму положительны. В процессе развития культуры число грамотрицательных клеток все более возрастает. Это потерявшие активность и мертвые клетки [1].
Данные штаммы ацетоно-бутиловых бактерий сбраживают как гексозные моносахариды (глюкозу, фруктозу, маннозу, галактозу), так и пентозные (ксилоза, арабиноза) а также рамнозу (6-дезоксиманноза) и сахарозу. Установлено, что они обладают гемицеллюлазной активностью [17].
В присутствии углеводов они сбраживают следующие кислоты: уксусную, масляную. Утилизируют минеральный азот только в присутствии экстракта дрожжей. Из источников азота они утилизируют отдельные аминокислоты, в том числе аспарагин, но присутствие в питательном субстрате источника азота из смеси 18 аминокислот для их роста недостаточно.
Ацетоно-бутиловые бактерии развиваются в присутствии ростовых веществ, содержащихся в дрожжевых автолизатах, а также в зерновых культурах: кукурузе, пшенице, ржи, а также картофеле. Установлено, что из витаминов им необходимы два: биотин и пара-аминобензойная кислота [1, 17].
Длительное хранение бактерий вида Cl. acetobutylicum возможно после леофилизации, а также в средах с минимальным содержанием сбраживемых Сахаров (3% ржаной муки) в течение полгода. Культуру фер-
ментируют в термостате при 37 °C в течение 2−3 сут. Полученную суспензию бактерий хранят при 4−6 °С, споровую суспензию хранят в стерильной воде при 4 °C или стерильном 25% растворе глицерина при -70 °С.
Сырье и составы питательных субстратов. В процессе исследований были использованы следующие виды крахмалсодержащего сырья: обдирная ржаная мука, отруби и картофель. Ржаная мука содержала 65% полисахаридов, отруби — 60% легкогидролизуемых полисахаридов, картофель — 18% крахмала. Используемый образец мелассы содержал 54,31% РВИ (редуцирующих веществ после инверсии), в том числе 40% сахарозы.
Был проверен ряд субстратов следующего состава (мас. %):
а) 5−7% водная суспензия ржаной обдирной муки-
б) 6 и 7% суспензия ржаной обдирной муки с добавкой свекловичной мелассы в количестве 0,5 и 1,35% по РВИ-
в) 6 и 7% ржаной обдирной муки +1% мальтозы-
г) картофель — 25,0 (75% влажность, 18% крахмала), уксуснокислый аммоний — 0,15- мел — 0,2- цис-теин — 0,05- глюкоза — 5,0-
д) ржаная обдирная мука — 6, меласса — 0,5% по сахарозе, культуральная жидкость после масляно-кислого брожения со штаммом Clostridium tyrobutiricum ВКПМ В-9615 или В-10 406 или со штаммом Clostridium butiricum ВКПМ В-9619 — 4−30, вода — остальное (условный крахмал в субстрате 4,375 мас. %) —
е) смешанный субстрат из ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки и отрубей.
Для проведения процессов брожения использовали синтетические питательные субстраты SOL [41, 42] и MSS [17].
Агаризованные питательные субстраты готовили на основе среды SOL c содержанием агара 1,5%.
В качестве гидролизатов пентозансодержащего сырья использовали один образец осветленного ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки (d& lt-1MM, РВИ=5,9%- РВ=5,54%, ГМ 1: 7, а.с.в. 7,02%, рН 4,5). Для его приготовления проводили гидротермообработку при t= 100 °C в течение 1ч и двухступенчатый ферментативный гидролиз. (Первая ступень: ксиланаза (НПО «ВОСТОК») при температуре 50 °C, рН 5,0 в течение 1 ч. Вторая ступень: GC-220, МЭК-СХ3 и Novozim при температуре 50 °C, рН 5,5−4,5 в течение 20 ч.) Гидролизат нейтрализовали до рН 6,0 2N раствором NaOH и фильтровали. Готовили два образца питательных субстратов, один обогащали минеральными и ростовыми компонентами путем добавления 3% отрубей, другой 3% (по отрубям) ферментативного гидролизата отрубей. Содержание редуцирующих веществ в субстратах приведены в таблицах 1 и 2.
Синтетические среды стерилизовали при t=120 °C в течение 30 мин- субстраты, содержащие мелассу и муку — при 135 °C, в течение 1,5 ч (суммарное время нагрева, выдержки и охлаждения).
Методы анализа. Содержание свободных масляной и уксусной кислот, а также растворителей (н-бутанол, ацетон, этанол) в культуральной жидкости (КЖ) и органической фазе определяли методом газо-хроматографического анализа (ГХ) с пламенно-ионизационным детектированием. Использовали капиллярную колонку Heliflex® AT-AquaWAX-DA (Grace) длинной 15−30 м, внутр. диаметр 0,5−0,32 мм, толщина пленки 0,25 мкм. В качестве внутренних стандартов применяли 0,2% об. растворы н-пентанола и пропионо-вой кислоты. Система сбора и обработки данных «Мультихром» на основе персонального компьютера. Погрешность определения в диапазоне концентраций 500−10 000 мг/л составляет менее 10% относительных.
Концентрацию редуцирующих веществ (РВ), пересчитанных на глюкозу, в КЖ и субстратах определяли фотоколориметрическим методом с реактивом DNSA на фотоколориметре марки КФК — 2 М [17].
Для определения концентрации редуцирующих веществ после инверсии (РВИ), пересчитанных на глюкозу, в КЖ (субстрате) использовали известный принцип анализа [43].
Содержание углеводов в кукурузной кочерыжке и мелассе определяли эбулиостатическим методом [44].
Определение растворимых и легкогидролизуемых углеводов в крахмалсодержащем сырье по ГОСТ 26 176–91 [45].
Методы исследовании. УФ-облучению подвергали суспензию микроорганизмов, выращенных на жидкой среде MSS (12−18 ч) после добавления стерильного фугата культуральной жидкости маслянокис-лых бактерий в количестве 50 мас.%. Отбор высокопродуктивного штамма осуществляли в несколько последовательных этапов: с твердой агаризованной среды и жидкой среды MSS по биомассе, с суспензионной 6% мучной среды по времени брожения и затем по биосинтезу н-бутанола. Отобранный вариант адап-
тировали к культуральной жидкости маслянокислых бактерий в количестве от 4 до 30% по объему к субстрату с проверкой биосинтеза н-бутанола.
Брожение проводили в лабораторных, статических, строго анаэробных условиях во флаконах общим объемом 120 см³ и рабочим объемом 50 см³, доза посевного материала 2−5 об.%. Условия ферментации: рН 4,0−6,3, температура 37 °C, 48−96 ч.
Методика ферментации маслянокислых бактерий представлена в предыдущих работах данных авторов [41, 42].
Методика экстрактивной ацетоно-бутиловой ферментации представлена в предыдущей работе дан-ныхавторов [46].
Количество параллельных ферментаций — от 2 до 5 раз. Среднее квадратичное отклонение результата измерения концентрации МК составляет 0,25. При доверительной вероятности 0,95 коэффициент Стьюдента равен 3,182. Доверительные границы случайной погрешности полученного результата составляют 0,79 г/л. Среднее квадратичное отклонение концентрации н-бутанола составляет 0,212. Коэффициент Стьюдента равен 2,571. Доверительные границы случайной погрешности полученного результата — 0,55 г/л [47].
Обсуждениерезультатов
Разработка состава питательного субстрата для оценки свойств коллекционных штаммов-продуцентов н-бутанола. Коллекционные штаммы С1. асе (оЬи (уИсит № 6, № 7, ВКПМ В-4786 выращивали на различных крахмалсодержащих питательных субстратах, результаты исследований даны в таблице 1.
Из данных таблицы 1 видно, что при брожении суспензии ржаной муки штамм № 6 превосходит штаммы № 7 и ВКПМ В-4786 по продуктивности и выходам н-бутанола и суммы растворителей. При брожении субстратов из 7% ржаной муки для штаммов № 6 и ВКПМ В-4786 получены максимальные концентрации н-бутанола 9,5 и 9,0 г/дм3 и суммы растворителей 17,6 и 15,3 г/дм3 соответственно. При этом продуктивность штамма № 6 по н-бутанолу и сумме растворителей составляет 0,13 и 0,24 г/л/дм3 соответственно при времени брожения 72 ч.
Зависимости выходов н-бутанола и суммы растворителей от нагрузки по условному крахмалу пред -ставлены на рисунке 1. Выхода н-бутанола и суммы растворителей у штамма № 6 составляют 20,8 и 38,7% от крахмала в субстрате при максимальной нагрузке по крахмалу 45,5 г/дм3. Для штамма ВКПМ В-4786 максимальной нагрузкой по крахмалу является концентрация в питательном субстрате 39 г/дм3. При низкой продуктивности выхода по н-бутанолу и сумме растворителей составили 21,3 и 36,7% соответственно от крахмала в субстрате.
При ферментации данных коллекционных штаммов на суспензии ржаной муки процесс кислотооб-разования идет вяло, соответственно, затягивается процесс биосинтеза растворителей. Основным компонентом питательных субстратов, усиливающих процесс кислотообразования у клостридий, является витамин биотин. Биотин содержится в мелассе и отрубях (0,1 и 0,7−0,8 мг/кг соответственно [40]).
Рис. 1. Зависимость выходов н-бутанола и суммы растворителей от нагрузки по крахмалу при брожении субстратов из ржаной муки
40 38 36 -34 32 30 -28 26 -24 22 20 -18 16 14
30
-выход н-бутанола, № 6-
-д- выход суммы растворителей, № 6-
42 44 46 48 50 Нагрузка по крахмалу, г/л
¦ выход н-бутанола, ВКПМ В-4786- -выход суммы растворителей, ВКПМ В-4786.
32
34
36
38
40
Таблица 1. Эффективность ацетоно-бутиловой ферментации коллекционных штаммов С1. асе (оЬШуИсит
Состав среды Номер штамма Состав продуктов брожения, г/дм3 Время, ч Продуктивность, г/дм3/ч Выход от субстрата, %
к-бутанол ацетон этанол сумма растворителей кислоты
масляная уксусная н- бутанола растворителей н- бутанола растворителей
6% суспензия ржаной муки № 7 7,1 4,7 0,8 12,6 0,6 0,7 72 0,10 0,18 18,2 32,3
(крахмал 39,0 г/дм3) № 6 8,3 4,0 0,7 13,0 1,0 1,1 72 0,12 0,18 21,2 33,3
ВКПМ В-4786 8,3 5,3 0,65 14,3 0,85 0,6 168 0,05 0,09 21,3 36,7
6% ржаная мука + 0. 5% сахароза мелассы № 6 8,3 4,6 0,6 13,5 0,9 1,2 48 0,17 0,28 18,9 30,9
(43,75 г/дм3) ВКПМ В-4786 8,4 4,9 0,8 14,1 0,8 1,3 96 0,09 0,15 19,2 32,2
6% ржаная мука + 1,35% РВИ мелассы № 6 9,1 4,0 2,3 15,4 1,15 1,33 96 0,10 0,16 17,6 29,7
(51,8 г/дм3) ВКПМ В-4786 9,08 4,73 1,1 14,9 0,83 1,35 120 0,08 0,12 17,5 28,8
6% суспензия ржаной муки + 1,0% маль- № 7 9,0 6,5 0,7 16,2 0,3 0,7 72 0,13 0,23 18,8 33,8
тозы (условный крахмал 48,0 г/дм3) № 6 9,0 6,0 1,3 16,3 0,2 0,7 63 0,14 0,26 18,8 33,9
ВКПМ В-4786 9,3 5,4 0,7 15,4 1,0 0,4 72 0,13 0,21 19,4 32,1
7% ржаная мука (условный крахмал № 6 9,5 6,2 1,9 17,6 1,6 2,3 72 0,13 0,24 20,8 38,7
45,5 г/дм3) ВКПМ В-4786 9,0 5,7 0,6 15,3 0,6 0,6 240 0,04 0,06 19,8 33,6
6% суспензия ржаной муки + отруби 10% № 7 8,5 5,0 0,8 14,3 0,7 0,8 72 0,12 0,20 19,8 33,3
по крахмалу (крахмал 42,9 г/дм3) № 6 7,2 3,7 1,7 12,6 0,4 1,0 72 0,10 0,18 16,8 29,4
ВКПМ В-4786 7,5 4,8 0,7 13,0 0,8 1,6 96 0,08 0,14 17,5 30,3
6% ржаная мука + отруби 10% по крахма- № 6 9,0 6,0 1,3 16,3 0,2 0,7 63 0,14 0,26 17,3 31,4
лу +1% мальтоза (условный крахмал 51,9 8,0 5,0 1,0 14,0 0,5 1,0 168 — - - -
г/дм3) ВКПМ В-4786 4,0 2,4 0,2 6,6 1,3 1,5 168 — - - -
11,0 7,1 0,9 18,9 4,0 0,5 408 0,03 0,05 21,2 36,4
7% ржаная мука+ 1,35% РВИ мелассы № 7 2,0 0,8 0,3 3,1 5,2 8,5 48 0,04 0,07 3,4 5,3
(условный крахмал 58,3 г/дм3) № 6 11,7 5,9 2,2 19,2 1,4 1,6 54 0,23 0,36 20,0 32,9
ВКПМ В-4786 11,2 6,8 1,5 20,0 3,1 3,8 48 0,23 0,42 19,2 34,3
5% глюкозы +2% ржаной муки (условный № 7 9,4 5,6 0,6 15,6 1,0 1,5 72 0,13 0,22 16,2 26,9
крахмал 58,0 г/дм3) № 6 11,0 6,8 2,2 20,0 1,0 1,0 72 0,15 0,28 18,9 34,5
ВКПМ В-4786 10,0 6,0 0,6 16,6 0,8 1,8 96 0,10 0,17 17,2 28,6
МББ, 6% глюкоза, (остаточные ВКПМ В-4786 9,5 3,9 1,5 14,8 0,8 0,5 96 0,10 0,17 18,2** 29,6**
РВ=5 г/дм3) 64%
ФГКК* + 3% отрубей (РВ=47,4 г/л- № 6 9,1 3,2 0,7 13,0 2,5 4,3 120 0,08 0,11 29,4** 42,4**
РВИ=74,4 г/л- остаточные РВ=16,4 г/дм3) 70%
¦ ферментативный гидролизат кукурузной кочерыжки- **- выхода от сброженных РВ.
При ацетоио-бутиловом брожении питательного субстрата из ржаной муки с добавлением мелассы в количестве 0,5−1,35 мас.% РВИ наблюдается увеличение кислотообразования, снижение времени брожения и как результат увеличение продуктивности (табл. 1). Для данных штаммов максимальным содержанием используемой мелассы (содержание сахарозы не менее 40 мас. %) в питательном субстрате является концентрация 1,35% РВИ. При концентрации РВИ данного образца мелассы в субстрате более 1,35% идет закисание.
Кроме того, увеличение нагрузки по углеводам в процессе ацетоно-бутиловой ферментации также ведет к закисанию. Уксусная и масляная кислоты в концентрациях более 5−7 и 4−7 г/дм3 соответственно ингибируют процесс ферментации данных коллекционных штаммов.
Кинетические зависимости концентраций продуктов биосинтеза штаммами С1. асе (оЬи (уИсит № 6, ВКПМ В-4786 представлены на рисунках 2 и 3. При брожении субстратов из муки и мелассы (7% ржаной муки и 1,35% РВИ мелассы) достигнута максимальная концентрация н-бутанола со штаммами № 6 и ВКПМ В-4786 11,7 и 11,2 г/дм3 и концентрации суммы растворителей 19,2 и 20,0 г/дм3 соответственно. Максимальная нагрузка по условному крахмалу для штаммов № 6 и ВКПМ В-4786 в условиях данных исследований составляет 58,3 г/дм3 (рис. 4). При этом продуктивность по н-бутанола равна 0,23 г/дм3/ч для обоих штаммов и по сумме растворителей 0,36 г/дм3/ч для штамма № 6 и 0,42 г/дм3/ч — для ВКПМ В-4786. Выхода н-бутанола и суммы растворителей для штамма № 6 составили 20,0 и 32,9% от условного крахмала в субстрате соответственно. Выхода н-бутанола и суммы растворителей для штамма ВКПМ В-4786 составили 19,2 и 34,3% соответственно (рис. 4).
Рис. 2. Кинетические кривые синтеза ратворителей при биоконверсии 7% суспензии ржаной муки и 1,35% РВИ мелассы штаммом С1. асе (оЬи (уИсит № 6
Рис. 3. Кинетические кривые синтеза растворителей при биоконверсии 7% ржаной муки и 1,35% РВИ мелассы штаммом С1. Лсе (оЬШуИсит ВКПМ В-4786
Рис. 4. Зависимость выходов н-бутанола и суммы растворителей от нагрузки по условному крахмалу при брожении субстратов из ржаной муки и мелассы
ж.
А-
. •Ж '-. ¦А.

50 52 54 56 58 60 Нагрузка по условному крахмалу, г/л
-Ф- выход н-бутанола, № 6-
--В- - выход н-бутанола, ВКПМ В_4786-
выход суммы растворителей, № 6- --ж--выход суммы растворителей, ВКПМ В 4786.
40
42
44
46
48
По данным рисунков 1, 4 и таблицы 1 видно, что при ацетоно-бутиловом брожении смешанного субстрата из ржаной муки и мелассы выхода н-бутанола и суммы растворителей для обоих штаммов приблизительно одинаковы. Максимальная нагрузка по условному крахмалу в сравнении с брожением ржаной муки выше 58 г/дм3. При этом максимальные выхода н-бутанола и суммы растворителей составляют 19−20% и 3334% соответственно. В условиях эксперимента наблюдается снижение выходов продуктов биосинтеза при введении мелассы в субстрат на 2−5%, в сравнении с процессом брожения субстрата из ржаной мукой.
При замене 1% сахарозы мелассы на мальтозу в таком же количестве наблюдается увеличение продуктивности и выходов н-бутанола и суммы растворителей на 1−2 и 3−4% соответственно (табл. 1).
При ферментации штамма ВКПМ В-4786 на субстрате с добавками отрубей выход н-бутанола и суммы растворителей выше по сравнению со штаммом № 6, а продуктивность ниже.
При ферментации данных штаммов на субстрате только из отрубей и их ферментативных гидроли-затах с мелассой идет закисание. При ферментации штамма № 6 на ферментативных гидролизатах отрубей брожение идет активно в сторону выделения большого количества газов, наблюдались взрывы флаконов.
Введение 2% муки в 5% водный раствор глюкозы позволяет провести ацетоно-бутиловое брожение без продувки азотом и добавок макро- и микроэлементов, витаминов. Данный вывод подтверждают данные авторов [8], которые заменили состав среды Р2 зерновым затором с концентрацией зерна 1,67 мас.%.
При ацетоно-бутиловой ферментации штамма № 6 на смешанном субстрате, состоящем из ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки и пшеничных отрубей, в интервале рН 4,5−5,0 получены удовлетворительные результаты. Ферментация со штаммом ВКПМ В-4786 в данных условиях не идет, в том числе и на субстрате, продутом азотом. При замене отрубей на ферментативный гидролизат получить нейтральные растворители не удалось, идет закисание со штаммом № 6, и брожение со штаммом ВКПМ В-4786 не идет.
При ацетоно-бутиловой ферментации данных штаммов доля н-бутанола в составе суммы растворителей зависит от состава субстрата следующим образом: на крахмалсодержащих и смешанных субстратах — 55−61%- на глюкозе со штаммом ВКПМ В-4786 — 64%- на смешанном субстрате из ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки и отрубей со штаммом № 6 — 70%.
Таким образом, из данных таблицы 1 и рисунков 1−4 можно сделать следующие выводы:
а) продуктивность штамма № 6 выше, чем у остальных исследуемых коллекционных штаммов на крахмалсодержащих субстратах- максимальные выхода суммы растворителей от крахмала в субстрате получены в процессе брожения субстрата из 6% ржаной муки с отрубями и без них со штаммом ВКПМ В-4786 (36,7%) и 7% ржаной муки со штаммом № 6 (38,7%) —
б) использование данного образца мелассы в составе субстрата в количестве 0,5−1,35% по РВИ снижает выход продуктов биосинтеза на 2−5%-
в) при введении Сахаров более низкой молекулярной массы (сахароза, мальтоза), чем крахмал муки, в количестве 1% позволяет увеличивать нагрузку по условному крахмалу до 58 г/дм3 (субстрат 7% ржаной муки и 1,35% РВИ мелассы) и получать культуральную жидкость с концентрацией н-бутанола около 11 г/дм3 и суммы растворителей 19−20 г/дм3-
д) 2% ржаной муки и 3% пшеничных отрубей в составе субстратов, содержащих моносахариды, обеспечивают типовой процесс ферментации данных штаммов необходимыми макро- и микроэлементами, ростовыми веществами-
е) доля н-бутанола в составе растворителей при брожении глюкозы и моносахаров смешанного суб -страта из ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки и отрубей составляет 64−70%.
Разработка состава питательного субстрата для оценки свойств новых штаммов С1. асе (оЬи (уИсит ВКПМ В-10 289 и ВКПМ В-10 290 — продуцентов н-бутанола. Эффективность процесса ацетоно-бутилового брожения различных крахмал- и сахарсодержащих субстратов с новыми штаммами представлена в таблице 2. Кинетические характеристики штаммов представлены на рисунках 5 и 6, зависимости выходов н-бутанола и суммы растворителей от концентрации условного крахмала в субстрате — на рисунке 7.
Из данных таблицы 2 видно, что полученные штаммы С1. асе^ЬШуНсит ВКПМ В 10 289 и ВКПМ В-10 290 на смешанных субстратах из крахмал-(ржаной муки) и сахарсодержащего сырья (мелассы) показывают лучшие результаты, чем исходные коллекционные штаммы. Штамм ВКПМ В 10 289 дает максимальные концентрации н-бутанола 13−14 г/дм3 и суммы растворителей 22−23 г/дм3, продуктивности 0,190,28 и 0,32−0,47 г/дм3/ч и выхода 23−27 и 39−44% соответственно от условного крахмала в субстрате. Для штамма ВКПМ В-10 290 максимальные концентрации н-бутанола составляют 12−20 г/дм3 и суммы растворителей 18−32 г/дм3, продуктивности 0,22−0,25 и 0,37 г/дм3/ч, выхода 25−32 и 37−53% соответственно от условного крахмала в субстрате.
Таблица 2. Эффективность процесса ацетоно-бутиловой ферментации штаммов С1. асв (оЬи^уИсит ВКПМ В 10 289 и ВКПМ В-10 290
Состав субстрата Наименование штамма Состав продуктов брожения, г/дм3 Время, ч Продуктивность, г/дм3/ч Выход от исходного крахмала, %
н-бутанол ацетон этанол сумма растворителей кислоты
масляная уксусная к-бутанол растворители к-бутанола растворителей
6% ржаная мука (39 г/дм3 крахмал) ВКПМВ 10 289 9,0 5,1 1,6 15,7 1,0 0,6 48 0,19 0,33 23,3 40,5
ВКПМ В-10 290 9,0 5,7 0,6 15,3 0,6 0,6 72 0,12 0,21 23 39
6% ржаная мука + 0. 5% сахароза мелас- ВКПМВ 10 289 8,6 4,5 1,4 14,5 0,8 0,7 48 0,18 0,30 19,7 33,1
сы (?43,75 г/дм3) ВКПМ В-10 290 9,4 5,1 1,0 15,5 1,0 1,5 96 0,10 0,16 21,5 35,4
6% ржаная мука +1% сахароза ВКПМВ 10 289 14,0 7,4 1,5 22,9 0,0 0,0 72 0,19 0,32 27,0 44,2
(Х48. 5г/дм3) ВКПМ В-10 290 10,7 4,7 2,4 17,8 1,0 1,8 96 0,11 0,18 22,1 36,7
7% ржаная мука (45.5 г/дм3 условного ВКПМВ 10 289 8,8 4,8 0,7 14,3 0,8 1,0 96 0,09 0,15 19,3 31,5
крахмала) ВКПМ В-10 290 12,0 6,8 1,2 20 2,0 3,4 54 0,22 0,37 26,4 43,9
7% ржаная мука + 1% сахароза мелассы ВКПМВ 10 289 13,5 6,1 3,0 22,6 2,0 2,4 48 0,28 0,47 23,2 38,8
(Х55 г/дм3) ВКПМ В-10 290 11,5 6,0 1,6 19,1 3,0 5,0 48 0,24 0,39 20,9 34,7
7% ржаная мука +1% сахароза мелассы ВКПМ В-10 290 20,0 9,7 3,5 33,2 2,17 2,53 96 0,22 0,36 32,3 53,5
+1% мальтозы (Х62 г/ дм3) (60%)
6. 3% а. с картофеля + 5% глюкозы ВКПМ В-10 290 12,2 4,4 1,4 18,0 0,8 1,1 48 0,25 0,37 24,9** 36,8**
(^56,3 г/дм3 условного крахмала- оста- (68%)
точные РВ=7,4 г/ дм3)
6% отруби+1% сахарозы мелассы ВКПМ В-10 289 0,9 0,05 0,3 — 1,9 0,9 72 — - - -
2,4 0,5 0,2 3,1 2,8 2,3 168 — - - -
6% ФГ отрубей+1% сахарозы мелассы+ ВКПМ В-10 289 0,4 0,2 0,06 — 6,8 4,7 24 — - - -
и-аминобензойная кислота 0,4 0,3 0,06 — 6,7 4,6 48 — - - -
(РВИ=37 г/дм3, РВ=19,8 г/дм3) 0,8 0,3 0,1 — 5,1 3,5 168 — - - -
ФГКК*+3% ФГ отрубей (РВИ=68,8 ВКПМ В-10 290 4,2 1,1 0,3 5,6 7,5 6,4 144 0,03 0,04 16,5** 21,9**
г/дм3, РВ=48,5 г/дм3, остаточные (75%)
РВИ=24,0 г/дм3 и РВ=23,0 г/дм3)
¦ ферментативный гидролизат кукурузной кочерыжки- **- выхода от сброженных РВ.
к» к» ЧО

100 120 Время, ч
— ацетон- - - -i ¦ - этанол- --ж — - масляная кислота-
Рис. 5. Кинетические кривые синтеза растворителей при биоконверсии 7% суспензии ржаной муки и 1,35% РВИ мелассы штаммом С1. асе (оЬи (уИсит СВ-6−1
-t
• •уксусная кислота
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110 120 130
Время, ч
-О-бутанол- --¦--ацетон- ¦ ¦ -А- - - этанол-
-¦Ж--масляная кислота- --•-& quot-уксусная кислота
Рис. 6. Кинетические кривые синтеза растворителей при биоконверсии 7% суспензии ржаной муки и 1,35% РВИ мелассы штаммом Cl. acetobutylicum СВ-2
14
12
12
10
8
щ 6
4
2
0
0
20
40
60
80
59 -,
54
49
44
39 —
34 —
29
24
19
14
. л
г
-----
-Ж& quot-'- ~~
-выход н-бутанола, ВКПМ В-10 289- -выход растворителей, ВКПМ В_10 289-
55 60 65
нагрузка по условному крахмалу, г/л
¦ выход н-бутанола, ВКПМ В-10 290- Ж — выход растворителей, ВКПМ В-10 290
Рис. 7. Зависимость выходов н-бутанола и суммы растворителей от нагрузки по условному крахмалу при брожении субстратов из ржаной муки и мелассы
Штамма ВКПМ В-10 290 интенсивно сбраживает картофельный субстрат, продуктивность по н-бутанолу 0,25, по сумме растворителей 0,37 г/дм3/ч. Штамм ВКПМ В 10 289 не сбродил картофельный субстрат и субстрат с содержанием условного крахмала 62 г/дм3.
По кинетическим кривым (рис. 5, 6) видно, что данные штаммы, адаптированные к культуральным жидкостям маслянокислого брожения с преимущественным содержанием масляной кислоты, в процессе аце-тоно-бутилового брожения выдерживают более высокие концентрации 7−8 г/дм3 масляной кислоты, которую сами продуцируют. Стадия кислотообразования у штамма СВ-2 ВКПМ В-10 290 в сравнении со штаммом СВ 6−1 ВКПМ В 10 289 идет интенсивнее до концентрации масляной кислоты 8 г/дм3 и в течение 48 ч.
Из данных рисунка 7 видно, что штамм СВ 6−1 ВКПМ В 10 289 показывает максимальные выходы при концентрации 48,4 г/дм3 условного крахмала, а штамм СВ-2 ВКПМ В-10 290 при концентрации условного крахмала более 56,3 г/дм3 на смешанном субстрате из ржаной муки и мелассы.
Брожение 6% суспензии отрубей и 1% сахарозы мелассы данными штаммами шло с образованием н-бутанола, но медленно и с низким выходом. Ферментативные гидролизаты отрубей с мелассой в процессе ацетоно-бутилового брожения закисали.
Ферментация штаммов на смешанных субстратах из ферментативных гидролизатов кукурузной кочерыжки и ферментативных гидролизатов отрубей в условиях исследований была неэффективной.
При ацетоно-бутиловой ферментации данных штаммов доля н-бутанола в составе суммы растворителей зависит от состава субстрата следующим образом: на крахмалсодержащих субстратах с мелассой 5961%, на картофельном субстрате 68% и на смешанном субстрате из ферментативных гидролизатов кукурузной кочерыжки и отрубей 75%.
40
45
50
Для адаптации штаммов к культуральным жидкостям маслянокислых бактерий был выбран субстрат, дающий минимальный выход растворителей (33−35%) — это суспензия 6% ржаной муки с добавкой 0,5% сахарозы мелассы (условный крахмал 43,75 г/л). На других субстратах с данными штаммами были получены выхода близкие к теоретическим (табл. 2), при этом условии от использования культуральных жидкостей маслянокислых бактерий можно получить только минимальный эффект, так как масляная кислота является не только источником биосинтеза н-бутанола, но и оказывает ингибирующее действие на рост и развитие культуры.
Результаты исследований представлены в таблице 3, а со штаммами С1. асв (оЬи (уИсит СВ-2 ВКПМ В-10 290 и С1. ?угоЬи (уг1сит ВКПМ В-10 406 в предыдущей работе авторов [39].
Из данных таблицы 3 видно, что оптимальным количеством добавки культуральных жидкостей С1. ?угоЬи^уггсит ВКПМ-10 406 и С1. Ьи1уггсит ВКПМ В-9619 в субстрат является 20 мас. %, выхода н-бутанола и суммы растворителей составили 23 и 36−38% от условного крахмала в субстрате, повышение выходов 2 и 3% соответственно.
Для штаммов С1. асвГоЬи! уНсит СВ-2 ВКПМ В-10 290 и С1. ?угоЬи!упсит ВКПМ В-10 406 выхода н-бутанола и суммы растворителей составили 25 и 40% соответственно от условного крахмала в субстрате, повышение выходов 3,5 и 5% [39].
При количестве культуральной жидкости в субстрате 20% мае. добавленная максимальная концентрация масляной кислоты не превышает 2 г/дм3, это составляет 1,68 г/дм3 н-бутанола при теоретическом выходе 84% от масляной кислоты или дополнительный максимальный выход н-бутанола от условного крахмала в субстрате должен быть 3,84%.
Экспериментальные данные хорошо согласуются с расчетными данными. Доля н-бутанола в составе растворителей соответственно увеличилась с 59−61 до 61−63%.
Таким образом, по представленным результатам исследований ацетоно-бутиловой ферментации новых штаммов С1. асеоЬиуНсит (СВ 6−1) ВКПМ В 10 289 и (СВ-2) ВКПМ В-10 290 можно сделать следующие выводы:
а) данные штаммы имеют более высокую продуктивность (0,19−0,28 г/дм3/ч по н-бутанолу и 0,320,47 г/дм3/ч г/л/ч по сумме растворителей) и дают более высокие концентрации н-бутанола 12−20 г/дм3 при выходе 26−32% и суммы растворителей 22,6−33,2 г/дм3 при выходе 39−53% от углеводов в субстрате в сравнении с исходными штаммами-
б) для штамма С1. асе (оЬи (уИсит СВ 6−1 (ВКПМ В-10 289) оптимальным является субстрат следующего состава: 6% мае. ржаная мука с 1% мае. сахарозы или 1% мальтозы, для штамма ВКПМ В-10 290 — 7% мае. ржаная мука с 1% мае. сахарозы и 1% мальтозы (максимальная нагрузка по условному крахмалу 48,5 и 56−62 г/дм3 соответственно) —
Таблица 3. Эффективность ацетоно-бутиловой ферментации штаммов, адаптированных к культуральным жидкостям маслянокислого брожения
Состав продуктов брожения, г/дм3 Выход от крахмала, %
Количество культуральной жидко- н КИСЛОТЫ л «О (и
сти в субстрате, мас.%. (и о 13 к н о К н о '- К
Наименование штамма л т ю 1 ж и, а а Н т масляная уксусная ж, а Н ю н и ё н л
С1. асегоЬигуИсит СВ-2 (ВКПМ В-10 290)
0 96 9,4 5,1 1,0 1,0 1,5 21,5 35,4
8, 24 2,8 1,6 0,1 2,5 1,9 — -
С1. Ьигупсит ВКПМ В 9619 (39 г/л) 48 9,1 5,1 0,6 0,6 1,3 23,3 37,9
20, 24 3,8 2,1 0,2 3,1 2,3 — -
С1. Ьигупсит ВКПМ В-9619 48 10,4 5,7 0,7 0,8 1,6 23,8 38,4
30, С1. Ьигупсит ВКПМ В-9619 48 1,6 0,6 0,1 2,5 1,9 — -
72 96 4,7 9,9 2,4 5,0 0,3 0,6 1,4 2,2 2,1 3,2 22,6 35,4
С1. acetoЬutylicum СВ 6−1 (ВКПМ В-10 289)
0 48 8,6 4,5 1,4 0,8 0,7 19,7 33,1
4 24 6,2 3,7 1,4 0,8 1,6 — -
С1. Ьигупсит ВКПМ В-9619 (39 г/л) 48 7,8 5,0 1,6 1,2 0,3 20,0 36,9
20, 24 3,53 1,77 0,20 2,1 1,9 — -
С1. Ъ^упсиш ВКПМ В-9619 48 9,90 5,19 0,72 1,4 1,7 22,6 36,1
в) картофельный субстрат является перспективным для штамма Cl. acetobutylicum СВ-2 (ВКПМ В-10 290) —
г) доля н-бутанола в составе суммы растворителей зависит от состава субстрата следующим образом: из ржаной муки с мелассой 59−61%, со штаммом СВ-2 ВКПМ В-10 290 на картофельном субстрате с глюкозой 68% и на смешанном субстрате из ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки и отрубей 75%-
д) показана возможность использования культуральной жидкости маслянокислого брожения с преимущественным содержанием масляной кислоты в составе субстрата для процесса ацетоно-бутилового брожения в количестве 20% об.- при этом увеличивается выхода н-бутанола на 2−3,5% и суммы растворителей на 3−5% от условного крахмала в субстрате, доля н-бутанола в составе растворителей на крахмалсо-держащем субстрате составляет 61−63%.
Эффективность ацетоно-бутиловой ферментации смешанных культур. Эффективность типового процесса ацетоно-бутиловой ферментации с использованием симбиоза культур Cl. acetobutylicum и Cl. tyrobutyricum или Cl. butyricum проверялась как с коллекционными штаммами [44], так и вновь полученными. Совместное использование двух видов бактерий рода Clostridium возможно благодаря совпадению оптимальных параметров процесса ацидогенеза (процесса образования кислот) маслянокислого и ацетоно-бутанольного брожений: t=35−37 °С, рН 5,7−6,5. При снижении рН ниже 5,7 Clostridium acetobutylicum из масляной кислоты продуцируют бутанол.
Культуры маслянокислого и ацетоно-бутилового брожений засевали в соотношении 1 — 11: 1. Субстраты с глюкозой продували азотом. Результаты исследований представлены в таблице 4 и на рисунках 8 и 9.
Из данных таблицы 4 и рисунков 8 и 9 видно, что при брожении глюкозы симбиозом культур эффект выражается в увеличении доли н-бутанола в составе растворителей до 66−75%. При концентрации глюкозы в субстрате не более 5% выхода н-бутанола и суммы растворителей составили 29−30 и 42−43% от сброженных углеводов соответственно. Но время брожения процесса определяется медленно бродящей культурой, т. е. культурой маслянокислого брожения и составляет 144−192 ч.
При брожении смешанного субстрата из ферментативного гидролизата кукурузной кочерыжки и отрубей получены результаты аналогичные данным с монокультурой № 6 (табл. 1). Доля н-бутанола в составе растворителей 69% (70%) и выхода н-бутанола и суммы растворителей составляют 30 (29,4%) и 43,7% (42,4%) соответственно от сброженных РВ.
Таким образом, симбиотическим консорциумом двух бактерий рода Clostridium, в котором продукт метаболизма маслянокислых бактерий — масляная кислота служит субстратом для синтеза н-бутанола бактериями Cl. acetobutylicum в типовом процессе ацетоно-бутилового брожения раствора с концентрацией 30−50 г/дм3 глюкозы и других моно- и диосахаров с добавками отрубей позволяет получить выход н-бутанола и суммы растворителей 27−30% и 40−43% соответственно от сброженого условного крахмала и долю н-бутанола в составе суммы растворителей 66−75%.
Реализация процесса ацетоно-бутилового брожения со смешанными культурами возможна после проведения селекционных работ с культурами маслянокислого брожения с целью сокращения времени процесса до 48−72 ч.
0 25 50 75 100 125 150 175 200 225 250
время, ч
-ф-н-бутанол- -в--ацетон- ---i--этанол-
--Ж--масляная кислота- --#-- уксусная кислота
Рис. 8. Кинетические кривые синтеза растворителей смешанными культурами Cl. acetobutylicum № 6 и Cl. tyrobutyricum ВКПМ В-9615 на 5% растворе глюкозы с 1% мальтозы
-Ф- н-бутанол- - -¦
--Ж-- масляная кислота- --i
— ацетон-
--уксусная кислота
175 200 — этанол-
Рис. 9. Кинетические кривые синтеза растворителей смешанными культурами СТ. acetobutylicum ВКПМ-4786 и, а tyrobutyricum ВКПМ-9615 на 6% растворе глюкозы
12
12
10
10
8
8
6
6
4
4
Ег 2
2
0
0
0
25
50
75
100
125
150
250
Таблица 4. Показатели процесса ацетоио-бутиловой ферментации смешанными культурами клостридий
Наименования культур, Состав питательного 1 ^ Концентрация условного Химический состав отработанной Выход от сброженного
их соотношение субстрата и ^ И И 1 крахмала, г/дм3 культуральной жидкости, г/дм условного крахмала, %
исходная* остаточная к-бутанол ацетон этанол МК УК к-бутанола растворителей
С1. tyroЬutyricum ВКПМ-9615
С1. acetoЬutylicum ВКПМ В- МББ, 6% глюкоза, 0,5% от- 192 46,1 2,9 11,0 1,6 2,15 0,8 1,0 25,5 34,1
4786 (11: 1) руби, витамины 74,6%
С1. acetoЬutylicum № 6 МББ, 5% глюкоза, 1% маль- 192 48,9 14,85 10,2 1,7 1,9 1,6 2,2 29,9 40,5
(1,7: 1) тоза, 0. 5% отруби, витамины 73,9%
С1. acetoЬutylicum ВКПМ 6% ФГ отрубей + 1,35% РВИ 144 26,9+11,5 = 13,3 7,6 4,2 0,4 1,1 2,2 30 48,6
В-4786 (3,5: 1) мелассы 38,4 62,3%
С1. acetoЬutylicum ВКПМ В- 6% ФГ отрубей + 1% РВИ 168 27,4 6,6 5,6 2,4 0,5 2,3 2,8 26,9 40,9
10 289 (2: 1) мелассы (РВ=35,04- РВИ=46,6г/дм3) 66%
и С1. acetoЬutylicum ВКПМ ФГКК**+3% отрубей 168 42,7 17,3 7,7 2,9 0,5 2,4 3,8 30,3 43,7
В-10 289 (1: 1) (РВ=47. 4- РВИ=74.4 г/дм3) 69%
а. Ьutyricum ВКПМ-9619
С1. acetoЬutylicum ВКПМ В- МББ, 5% глюкоза, 0,74% 144 42,0+0,74 = 9,0 9,6 3,6 1,2 1,3 2,5 28,5 42,7
10 290 (1: 1) РВИ ФГ отрубей+0,5% отруби, витамины 42,74 66,6%
Примечания. * - исходная концентрация рассчитана с учетом разбавления посевным материалом- ** - ферментативный гидролизат кукурузной кочерыжки.
к» и) и)
Экстрактивная ацетоно-бутиловая ферментация. Разработана технологическая схема получения н-бутанола, включающая процесс экстракции н-бутанола олеиловым спиртом из культуральной жидкости в два этапа [46, 48]. В первом этапе экстракцию проводят в биореакторе в процессе ацетоно-бутилового брожения крахмалсодержащего субстрата или любого другого питательного субстрата с концентрацией углеводов 32−45 г/л. Восполнение источника углерода осуществляется 40% раствором глюкозы или любого другого концентрированного источника моносахаров. Олеиловый спирт добавляют на стадии максимального образования н-бутанола в исходном субстрате в количестве 0,3 к расходу культуральной жидкости. При завершении ферментации состав культуральной жидкости — рафината и экстракта следующие (г/дм3): н-бутанол — 7,5−8,2- ацетон — 7,0−7,8- этанол — 0,9−1,1 и н-бутанол — 30−35- ацетон — 2,2−2,5- этанол — 0,2−0,25 соответственно.
Второй этап проводят в противоточном экстракторе по завершению процесса ферментации. Такая схема позволяет исчерпывать н-бутанол из культуральной жидкости до концентрации 0,2 г/дм3 и получать концентрацию н-бутанола в экстрагенте 30−35 г/дм3 при соотношении общего объема олеилового спирта к расходу культуральной жидкости 0,6−0,7. Легколетучие компоненты ацетон и этанол могут быть извлечены из рафината и экстрагента путем испарения за счет разности давлений под вакуумом.
Выделение н-бутанола в процессе ацетоно-бутилового брожения обеспечивает непрерывность ферментации и экономию теплоэнергоресурсов при мойке и стерилизации ферментационного оборудования. Увеличение концентрации н-бутанола (30−35 г/дм3) в экстрагенте и регенерация экстрагента способствуют экономии теплоэнергоресурсов при ректификации.
Технологическая схема производства н-бутанола микробиологическим синтезом и со-продуктов ацетона и этанола. Разработана технологическая схема производства н-бутанола, основанная на комплексной переработке целлюлозо- и пентозансодержащего сырья, отрубей и мелассы и предусматривающая несколько вариантов.
1. Технологическая схема биосинтеза н-бутанола и масляной кислоты. Часть культуральной жидкости после маслянокислого брожения питательного субстрата из целлюлозо- и пентозансодержащего сырья и мелассы с культурой Cl. tyrobutyricum используют для получения масляной кислоты. Другую часть после или без отделения биомассы маслянокислых бактерий — для приготовления субстрата из ржаной муки и мелассы или из целлюлозо- и пентозансодержащего сырья и отрубей в производстве н-бутанола со штаммами Cl. acetobutylicum (СВ 6−1) ВКПМ В-10 289 или (СВ-2) ВКПМ В-10 289 с выходом суммы растворителей до 40% от условного крахмала в субстрате.
В результате реализации этой схемы, кроме н-бутанола, ацетона и этанола, будет получена масляная кислота.
Отработанную культуральную жидкость используют в процессе метанового брожения и дальше по схеме утилизации жидких и твердых отходов, рекомендуемой для производства этилового спирта из древесного сырья [40].
2. Технологическая схема, включающая непрерывный процесс экстрактивной ацетоно-бутиловой ферментации с выращиванием биомассы бактерий из ржаной муки с восполнением источника углерода из целлюлозо- и пентозансодержащего сырья и отрубей с выходом суммы растворителей 34,5% от сброженных углеводов, экстракцию н-бутанола из культуральной жидкости в противоточном экстракторе, выделение н-бутанола из экстракта и его очистку, регенерацию экстрагента путем ректификации- испарение легколетучих сопродуктов под вакуумом.
3. Технологическая схема по традиционной технологии производства н-бутанола, с использованием штаммов Cl. acetobutylicum № 6 или СВ 6−1 ВКПМ В-10 289 или СВ-2 ВКПМ В-10 289 или симбиотического консорциума двух бактерий Cl. tyrobutyricum и Cl. acetobutylicum,. обеспечивающая долю н-бутанола в составе растворителей 69−75% и выход н-бутанола и суммы растворителей до 30 и 43% от сброженных углеводов соответственно.
4. Технологическая схема по варианту 3 и после завершения процесса ферментации выделение н-бутанола из культуральной жидкости путем жидкостной экстракции олеиловым спиртом в противоточ-ном экстракторе, выделение н-бутанола из экстракта и его очистка, регенерация экстрагента путем ректификации- испарение легколетучих сопродуктов под вакуумом.
Список литературы
1. Логоткин И. С. Технология ацетонобутилового производства. М., 1958. 264 с.
2. Patakova P., Lipovsky J., Cizkova H., Fortova J., Rychtera M., Melzoch K. Exploitation of Food Feedstock and Waste for Production of Biobutanol // Czech J. Food Sci. 2009. Vol. 27, N4. Pp. 276−283.
3. Яроцкий C.B., Сушкова В. И., Синеокий С. П., Лукина Г. П. Экономический анализ производства биобутанола и перспективы его развития // Деп. в ВИНИТИ 10. 04. 08, № 308−2008. 65 c.
4. Ramey D. Production of bytyric acid and butanol from biomass. Final repor // Work performed under: contract № DE-F-G-02−00ER 86 106 for Departament of Energy. Morgantown, WV, 2004.
5. Сушкова В. И., Яроцкий C.B. Эффективность методов выделения продуктов ацетоно-бутиловой ферментации // Химия растительного сырья. 2011. № 3. С. 5−14.
6. Qureshi N. Agricultural residues and energy crops as potentially economical and novel substrates for microbial production of butanol (a biofuel) // CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. 2010. Vol. 5, N10. Pp. 1−8.
7. Madihah M.S., Ariff A.B., Sahaid K.M., Suraini A.A. and Karim M.I.A. Direct fermentation of gelatinized sago starch to aceton-butanol-ethanol by Cl. acetibutylicum // J. of Microb. & amp- Biotechnol. 2001. Vol. 17. Pp. 567−576.
8. Parekh M., Formanek J., Blaschek H.P. Pilot-scale production of by Clostridium beijerinckii BA 101 using a low-cost fermentation medium on corn steep water // Appl Microbiol Biotechnol. 1999. Vol. 51. Pp. 152.
9. Jesse T.W., Ezeji T.C., Qureshi N. and Blaschek H.P. Production of butanol from starch-based waste packing peanuts and agricultural waste // J. of Industrial Microb. & amp- Biotechnol. 2002. Vol. 29. Pp. 117−123.
10. Thaddeus C.E., Thaddeus N., Qureshi H.P. Blaschek Butanol Fermentation Reseach: Upstream and Downstream Manipulations // The Chemical Reconl. 2004. Vol. 4. Pp. 305−314.
11. Qureshi N., Lolas A. and Blaschek H.P. Soy molasses as fermentation substrate for production of butanol using Clostridium beijerinckii BA 101 // J. of Industrial Microb. & amp- Biotechnol. 2001. Vol. 26. Pp. 290−295.
12. Edhilvia J.C., Quresh N., and Blaschek H.P. Production of aceton, butanol and ethanol from Degemed corn using Clostridium beijerinckii BA 101 // Appleed Biochemistry and Biotechnology. 2002. Vol. 5. Pp. 98−100.
13. Ezeji T.C., Blaschek H.P. Fermentation of dried distillers'-grains and soluble (DDGS) hydrolysates to solvents and value-added products by solventogenic clostridia // Bioresource Technology. 2008. Vol. 99. Pp. 5232−5242.
14. Qureshi N.,, Saha B.C., Dien B., Hector R.E., Cotta M.A. Production of butanol (a biofuel) from agricultural residues: Part I — Use of barley straw hydrolysate // Biomass and bioenergy. 2010. Vol. 34. Pp. 559−565.
15. Formanek J., Mackie R., Blaschek H.P. Enhanced butanol production by Cl. beijerinckii BA101 grown in semide-fined P2 medium containing 6 percent maltodextrin or glucose // Appl. Environ. Microbiol. 1997. Vol. 63. Pp. 23 062 310.
16. Green E.M. Fermtytative production of butanol — the industrial perspective // Curr Opin Biotechnol. 2011. Vol. 22, N3. Pp. 337−343.
17. Березина O.B., Синеокий С. П., Великодворская Г. А., Шварц В., Зверлов В. В. Внеклеточная гликозилгидро-лазная активность клостридий, образующих ацетон, бутанол и этанол // Прикладная биохимия и микробиология. 2008. Т. 44, № 1. С. 49−55.
18. Сушкова В. И., Березина О. В., Яроцкий C.B. Эффективность ацетоно-бутилового брожения культурами Clostridium acetobutylicum // Общество, наука, инновации. НТК-2011: материалы ежегод. Всерос. науч. -технич. конф. Киров, 2011. Электронная версия. (CD-ROM). (Биологический факультет. Секция «Биотехнология» Статья № 20).
19. Патент № 95 103 597 (РФ). Штамм бактерий Clostridium acetibutylicum — продуцент н-бутилового спирта и ацетона / Г. П. Лукина, С. К. Абилев, И. К. Любимова, М. А. Великая, И. Е. Ежова, Т. В. Артюшкина / 1996.
20. Nasser N.K., Al-Shorgani, Kalil M.S., Yusoff W.M.W. The Effect of Different Carbon Sources on Biobutanol Production using Clostridium saccharoperbmylacetonicum N1−4 // Biotechnology 2011. Vol. 10, N3. Pp. 280−285.
21. Eunjong J., Kimoon D. -H. Fermentation of Rice Bran and Defatted Rice Bran for Butanol Production Using Clostridium beijerinckii NCIMB 8052 // Microbiol. Biotechnol. 2009. vol. 19, no. 5. Pp. 482−490.
22. Areesirisuk A., Laopaiboon L., Fangkum A., Ponchai N., Leelavacharamas V., Laopaiboon P. Growth and butanol production of Clostridium beijerinckii from sweet sorghum juice // Thai Journal of Biotechnology. 2008. Vol. 8, N1. Pp. 44−49.
23. Patakova P., Maxa D., Rychtera M., Linhova M., Fribert P., Muzikova Z., Lipovsky J., Paulova L., Pospisil M., Sebor G., Melzoch K. Perspectives of Biobutanol Production and Use // Biotechnology and Bioengineering. 2007. Vol. 97, N6. Pp. 243−266.
24. Qureshi N., Lolas A., Blaschek H.P. Soy molasses as fermentation substrate for production of butanol using Clostridium beijerinckii BA 101 // J. of Industrial Microb. & amp- Biotechnol. 2001. Vol. 26. Pp. 290−295.
25. Patakova P., Lipovsky J., Cizkova H., Fortova J., Rychtera M., Melzoch K. Exploitation of food feedstock and waste for production of biobutanol // Czech J. Food Sci. 2009. Vol. 27. Pp. 276−283.
26. Qureshi N., Saha B.C., Cotta M.A. Butanol production from wheat straw hydrolysate using Clostridium beijerinckii. Part II — Fed-batch fermentation // Bioprocess and Biosystems Engineering. 2007. Vol. 30. Pp. 419−427.
27. Ежова И. Е. Комплексное использование сырья в ацетоно-бутиловом производстве: автореф. дис. … канд. техн. наук. М., 1975. 29 с.
28. Qureshi N., Blaschek H.P. Butanol production from agricultural biomass // Food Biotechnology. 2005. Pp. 525−551.
29. Lin Y.L., Blaschek H.P., Butanol Production by a Butanol-Tolerant Strain of Clostridium acetobutylicum in Extruded Corn Broth // Applied and Environmental Microbiology. 1983. Vol. 45, N3. Pp. 966−973.
30. Gutierrez N.A., Maddox I.S., Schuster K.C., Swoboda H., Gapes J.R. Strain comparison and medium preparation for the acetone-butanol-ethanol (ABE) fermentation process using a substrate of potato // Bioresource Technology. 1998. Vol. 66. Pp. 263−265.
31. Nimcevic D., Schuster M., Gapes J.R. Solvent production by Clostridium beijerinckii NRRL B592 growing on different potato media // Applied Microbiology and Biotechnology. 1998. Vol. 50, N4. Pp. 426−428.
32. Grobben N.G., Eggink G., Cuperus F.P. and Huizing H.J. Production of aceton, butanol and etanol (ABE) from potato wastes: fermentation with Integrated Membrane Extraction // Applied Microbiology and Biotechnology. 1993. Vol. 39. Pp. 494−498.
33. Nimcevic D, Gapes J.R. The Acetone-Butanol Fermentation in Pilot Plant and Pre-Industrial Scale // J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2000. Vol. 2, N1. Pp. 15−20.
34. Коротких, A.A. Мировой рынок биотоплива. Состояние и перспективы // Россия и Америка в XXI веке. [Электронный ресурс]. URL: http: //www. rusus. ru/?act=read&-id=88
35. Edhilvia J.C., Quresh N., Blaschek H.P. Production of aceton, butanol and ethanol from Degemed corn using Clostridium beijerinckii BA 101 // Applied Biochemistry and Biotechnology. 2002. Vol. 5. Pp. 98−100.
36. Patent 4 326 032 (US). Process for the production of organic fuel / H. Leslie, E. Grove, A. Hoyt, Paul St. / 1982.
37. Patent 20 100 221 802 (US). Method for producing butanol using two-phase extractive fermentation / Grady M.C., Ja-hic M., Patnaik R. / 2010.
38. Patent 20 090 305 370 (US). Method for producing butanol using two-phase extractive fermentation / Grady M.C., Ja-hic M., Patnaik R. / 2009.
39. Roffler S.R., Blacnh H.W., Wilke C.R. In-situ recovery of butanol during fermentation // Bioprocess Engineering. 1987. № 2. C. 181−190.
40. Patent 5 753 474 (US). Continuous two stage, dual path anaerobic fermentation of butanol and other organic solvents using two different strains of bacteria / Ramey D.E. 1998.
41. Сушкова В. И., Жуковский C.B., Березина O.B., Яроцкий C.B. Биосинтез масляной кислоты штаммом Clostridium butyricum ВКПМ В-9619 из кукурузной кочерыжки и мелассы // Химия растительного сырья. 2011. № 1. С. 157−162.
42. Сушкова В. И., Березина О. В., Яроцкий С. В. Пути интенсификации процесса биосинтеза масляной кислоты // Химия растительного сырья. 2012. № 1. С. 171−180.
43. Сушкова В. И., Воробьёва Г. И. Безотходная конверсия растительного сырья в биологически активные вещества. М., 2008. 215 с.
44. Емельянова И. Э. Химико-технический контроль гидролизного производства. М., 1969. 365 с.
45. ГОСТ 26 176–91. Корма, Комбикорма. Методы определения растворимых и легкогидролизуемых углеводов. 1993.
46. Сушкова В. И., Яроцкий С. В., Сухоженко A.B. Процесс экстрактивной ацетоно-бутиловой ферментации // Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья: материалы V Всерос. конф. Барнаул, 2012. С. 382−383.
47. ГОСТ 8. 207−76. Прямые измерения с многократными наблюдениями. Методы обработки результатов наблюдений. Основные положения.
48. Заявка на патент 2 011 125 862/10(38 258) (RU). Способ получения н-бутанола / В. И. Сушкова, С. В. Яроцкий, В. Г. Дебабов / 2011.
49. Патент 2 406 763 (RU). Способ микробиологического синтеза н-бутанола / В. И. Сушкова, С. В. Яроцкий / 2010.
Поступило в редакцию 19 августа 2012 г.
После переработки 4 мая 2013 г.
Sushkova V.I. *, Yarotsky S.V., Suchozenko A.B. DEVELOPMENT TECHNOLOGICAL SCHEMATA OF PRODUCTION N-BUTANOL WITH CLOSTRIDIUMES
Research Institute for Genetics and Selection of Industrial Microorganisms, 1-st Dorozhniy pr., 1, 117 545 Moscow (Russia), e-mail: sushkovaval@mail. ru
With the object development technological schemata of production n-butanol of microbiological synthesis provided yield of amount solvents no less 40% from carbohydrates in media, do intensification of process acetone-butanol fermentation by means of obtain new strain Clostridium acetobutylicum ВКПМ B-10 289 и ВКПМ B-10 290 and optimization of composition starch-containing media with yield of amount solvents 39−53% from carbohydrates in media.
Develop technological schemata of production n-butanol use as bases on complex treatment mixture of a cellulose- or hemicellulose-containing material, bran, molasses, provided three variationesi 1. buosynthesis of n-butanol Cl. acetobutylicum CB-2 ВКПМ B-10 290 of rye flour with usage of fermentative liquid Cl. tyrobutyricum- 2. tow stage process of extraction n-butanol of fermentative liquid in acetone-butanol continuous fermentation and after her end- 3. production n-butanol by traditional technology with researched straines or of simbiosisal consortium two bacterias Cl. tyrobutyricum и Cl. acetobutylicum with or without extraction n-butanol of exhaust fermentative liquid. The yield of amount solvents following i 1 — up to 40% from carbohydrates in media- 2 — up to 34,5%- 3 — up to 43% from fermented carbohydrates.
Keywords: enzymatic hydrolysate, corn cabbage stump, bran, molasses, rye flour, strain, extractive fermentation, oleyl alcohol, productivity, yield, butyric acid, n-butanol, butyrate fermentation, acetono-butanol fermentation.
References
1. Logotkin I.S. Tekhnologiia atsetonobutilovogo proizvodstva. [Atsetonobutilovogo production technology]. Moscow, 1958, 264 p. (in Russ.).
2. Patakova P., Lipovsky J., Cizkova H., Fortova J., Rychtera M., Melzoch K. Czech J. Food Sci., 2009, vol. 27, no. 4, pp. 276−283.
3. Iarotskii S.V., Sushkova V.I., Sineokii S.P., Lukina G.P. Deposited at VINITI 10. 04. 08, N308−2008. 65 p. (in Russ.).
4. Ramey D. Work performed under: contract DE-F-G-02−00ER 8б10б for Departament of Energy. Morgantown, WV, 2004.
5. Sushkova V.I., Iarotskii S.V. Khimiia rastitel'-nogo syr'-ia, 2011, no. 3, pp. 5−14. (in Russ.).
6. Qureshi N. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources, 2010, vol. 5, no. 10, pp. 1−8.
7. Madihah M.S., Ariff A.B., Sahaid K.M., Suraini A.A., Karim M.I.A. J. of Microb. & amp- Biotechnol., 2001, vol. 17, pp. 567−576.
8. Parekh M., Formanek J., Blaschek H.P. Appl Microbiol Biotechnol, 1999, vol. 51, pp. 152.
9. Jesse T.W., Ezeji T.C., Qureshi N., Blaschek H.P. J. of Industrial Microb. & amp- Biotechnol., 2002, vol. 29, pp. 117−123.
10. Thaddeus C.E., Thaddeus N., Qureshi H.P. The ChemicalReconl., 2004, vol. 4, pp. 305−314.
11. Qureshi N., Lolas A. and Blaschek H.P. J. of Industrial Microb. & amp- Biotechnol, 2001, vol. 26, pp. 290−295.
12. Edhilvia J.C., Quresh N., Blaschek H.P. Appleed Biochemistry and Biotechnology, 2002, vol. 5, pp. 98−100.
13. Ezeji T.C., Blaschek H.P. Bioresource Technology, 2008, vol. 99, pp. 5232−5242.
14. Qureshi N.,, Saha B.C., Dien B., Hector R.E., Cotta M.A. Biomass and bioenergy, 2010, vol. 34, pp. 559−565.
15. Formanek J., Mackie R., Blaschek H.P. Appl. Environ. Microbiol., 1997, vol. 63, pp. 2306−2310.
16. Green E.M. Curr Opin Biotechnol., 2011, vol. 22, N3, pp. 337−343.
17. Berezina O.V., Sineokii S.P., Velikodvorskaia G.A., Shvarts V., Zverlov V.V. Prikladnaia biokhimiia i mikrobiologiia, 2008, vol. 44, no. 1, pp. 49−55. (in Russ.).
18. Sushkova V.I., Berezina O.V., Iarotskii S.V. Obshchestvo, nauka, innovatsii. NTK-2011: ezhegodnaia otkrytaia vserossiiskaia nauchno-tekhnichekaia konferentsiia: sbornik materialov. [Society, science and innovation. STC-2011 Annual Open All-Russian Science-Engineering Conference]. Kirov, 2011. CD-ROM. Article 20. (in Russ.).
19. Patent (RU). 1996. (in Russ.).
20. Nasser N.K., Al-Shorgani, Kalil M.S., Yusoff W.M.W. Biotechnology, 2011, vol. 10, no. 3, pp. 280−285.
21. Eunjong J., Kimoon D. -H. Microbiol. Biotechnol, 2009, vol. 19, no. 5. Pp. 482−490.
22. Areesirisuk A., Laopaiboon L., Fangkum A., Ponchai N., Leelavacharamas V., Laopaiboon P. Thai Journal of Biotechnology, 2008, vol. 8, no. 1, pp. 44−49.
23. Patakova P., Maxa D., Rychtera M., Linhova M., Fribert P., Muzikova Z., Lipovsky J., Paulova L., Pospisil M., Sebor G., Melzoch K. Biotechnology and Bioengineering, 2007, vol. 97, no. 6, pp. 243−266.
24. Qureshi N., Lolas A., Blaschek H.P. J. of Industrial Microb. & amp- Biotechnol, 2001, vol. 26, pp. 290−295.
25. Patakova P., Lipovsky J., Cizkova H., Foitova J., Rychtera M., Melzoch K. Czech J. Food Sci, 2009, vol. 27, pp. 276−283.
26. Qureshi N., Saha B.C., Cotta M.A. Bioprocess and Biosystems Engineering, 2007, vol. 30, pp. 419−427.
27. Ezhova I.E. Kompleksnoe ispol'-zovanie syr'-ia v atsetono-butilovom proizvodstve: avtoref. diss. kand. tekhn. nauk. [Integrated use of raw materials in the production of acetone-butyl i dissertation Candidate of Technical Sciences]. Moscow, 1975. 29 p. (in Russ.).
28. Qureshi N., Blaschek H.P. Food Biotechnology, 2005, pp. 525−551.
29. Lin Y.L., Blaschek H.P. Applied and Environmental Microbiology, 1983, vol. 45, no. 3, pp. 966−973.
* Corresponding author.
30. Gutierrez N.A., Maddox I.S., Schuster K.C., Swoboda H., Gapes J.R. Bioresource Technology, 1998, vol. 66, pp. 263−265.
31. Nimcevic D., Schuster M., Gapes J.R. Applied Microbiology and Biotechnology, 1998, vol. 50, no. 4, pp. 426−428.
32. Grobben N.G., Eggink G., Cuperus F.P., Huizing H.J. Applied Microbiology and Biotechnology, 1993, vol. 39, pp. 494−498.
33. Nimcevic D, Gapes J.R. J. Mol. Microbiol. Biotechnol., 2000, vol. 2, no. 1, pp. 15−20.
34. Korotkikh A.A. Rossiia i Amerika v XXI veke. [Russia and America in the XXI century]. URL: http: //www. rusus. ru/?act=read&-id=88 (in Russ.).
35. Edhilvia J.C., Quresh N., Blaschek H.P. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2002, vol. 5, pp. 98−100.
36. Patent 4 326 032 (US). 1982.
37. Patent 20 100 221 802 (US). 2010.
38. Patent 20 090 305 370 (US). 2009.
39. Roffler S.R., Blacnh H.W., Wilke C.R. Bioprocess Engineering, 1987, no. 2, pp. 181−190.
40. Patent 5 753 474 (US). 1998.
41. Sushkova V.I., Zhukovskii S.V., Berezina O.V., Iarotskii S.V. Khimiia rastitel'-nogo syr'-ia, 2011, no. 1, pp. 157−162. (in Russ.).
42. Sushkova V.I., Berezina O.V., Iarotskii S.V. Khimiia rastitel'-nogo syr'-ia, 2012, no. 1, pp. 171−180. (in Russ.).
43. Sushkova V.I., Vorob'-eva G.I. Bezotkhodnaia konversiia rastitel'-nogo syr'-ia v biologicheski aktivnye veshchestva. [Waste-free conversion of plant materials into biologically active substances]. Moscow, 2008, 215 p. (in Russ.).
44. Emel'-ianova I.E. Khimiko-tekhnicheskii kontrol'- gidroliznogo proizvodstva. [Chemical and technical control of hydrolysis production]. Moscow, 1969, 365 p. (in Russ.).
45. GOST 26 176−91. [26 176−91]. 1993. (in Russ.).
46. Sushkova V.I., Iarotskii S.V., Sukhozhenko A.V. Novye dostizheniia v khimii i khimicheskoi tekhnologii rastitel'-nogo syr'-ia: materialy V Vseros. konf. [New advances in chemistry and chemical engineering plant materials: the V All-Russian Conference]. Barnaul, 2012, pp. 382−383. (in Russ.).
47. GOST 8. 207−76. [State Standard 8. 207−76]. 1977. (in Russ.).
48. Patent Application 2 011 125 862/10(38 258) (RU). 2011. (in Russ.).
49. Patent 2 406 763 (RU). 2010. (in Russ.).
Received August 19, 2012
Revised May 4, 2013

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой