Иммобилизация тиаминкиназы из пивных дрожжей

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Химия


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

УДК 577. 152. 11:663. 11
ИММОБИЛИЗАЦИЯ ТИАМИНКИНАЗЫ ИЗ ПИВНЫХ ДРОЖЖЕЙ
И. П. Черникевич, д.х. н, профессор Кафедра общей и биоорганической химии УО «Гродненский государственный медицинский университет»
Осуществлена иммобилизация тиаминкиназы (КФ 2.7.6. 2) из Saccharomices carlsbergensis в гранулы альгината кальция. Показано, что наибольшей активностью обладают препараты, полученные при применении в качестве исходного раствора 0,4 Мхлорида кальция с добавлением этанола и последующей инкубацией гранул в 0,2 М CaCl2. Внесение в систему феррицианида калия увеличивает активность препарата на 26 — 30%. Выявлен стабилизирующий эффект бычьего сывороточного альбумина. Наиболее стабильным в реакционных условиях оказался препарат иммобилизированной тиаминкиназы, обработанный дополнительно 0, 25%раствором глута-рового диальдегида и содержащий в качестве стабилизирующей добавки феррицианид калия. Без заметной потери активности он может храниться не менее 3 месяцев или быть использован более 9 раз.
Ключевые слова: тиаминкиназа, иммобилизация.
The immobilization of thiamine kinase (EC 2.7.6. 2) from Saccharomices carlsbergensis into calcium alginate granules has been performed. It has been shown that the highest activity is characteristic of those preparations which are obtained with the use of the basic solution of 0.4 M calcium chloride with ethanol addition and subsequent incubation of granules in 0.2 M CaCl2 solution. The introduction ofkalium ferricyanide into the system increases the activity of the preparation by 26 — 30%. The stabilizing effect of bovine serum albumin has been revealed. The highest stability in reactivation state has been shown by the preparation of immobilized thiamine kinase which underwent additional treatment with 0. 25% solution of glutaric dialdehyde and which contains kalium ferricyanide as a stabilizing additive. Showing no marked activity loss it can be stored for no less than 3 months or it can be used for more than 9 times.
Key words: thiamine kinase, immobilization.
В основе разработок по биологическому катализу лежит уникальная способность ферментов в десятки и сотни тысяч раз ускорять реакции, идущие в условиях физиологических температур, pH среды и давления, что заметно удешевляет технологические процессы. Высокая специфичность ферментативного катализа обеспечивает большие выходы продукта и позволяет создавать практически безотходные производства, не загрязняющие окружающую среду.
Как правило, большинство ферментов, будучи извлеченными из своего естественного окружения, становятся весьма лабильными, т. е. быстро инактивируются при хранении, повышении температуры, изменении pH, под действием различных химических агентов. Именно это обстоятельство во многом препятствует технологическому применению биокатализаторов. Существенные успехи в этом направлении были достигнуты при иммобилизации ферментов. Фиксация фермента на водонепроницаемом носителе, либо включение его в структуру носителя позволяет использовать такой препарат многократно и значительно увеличить стабильность, что является экономически выгодным.
В качестве перспективного биокаталзитора для промышленного использования выступает тиаминкиназа, катализирующая двухсубстратную реакцию переноса пирофосфатной группировки от молекулы АТФ на тиамин:
АТФ + тиамина тиаминпирофосфат + АМФ.
К настоящему времени фермент выделен в высоко-очищенном состоянии из печени крысы [1], мозга свиньи [9], листьев петрушки [12], пивных дрожжей [3]. Описаны кинетическая модель функционирования тиамин-киназы, ее субстратная специфичность, аллостеричес-кая регуляция ионами металлов, механизм действия, пространственная организация [7]. Однако высокоочищен-ная молекула в водном растворе теряет до 40% исходной активности уже в первые трое суток хранения. Обычно низкую стабильность имеют аллостерические ферменты, обладающие четвертичной структурой со слабо свя-
занными субъединицами, легко диссоциирующими и подвергающимися быстрым необратимым изменениям после диссоциации [6]. Тиаминкиназа относится к классу регуляторных диссоциирующих ферментов [4]. Нарушение четвертичной структуры фермента зависит от его концентрации в растворе, рН, ионной силы раствора. Реассоциировать отдельные диссоциированные субъединицы при этом не удается [4]. Неустойчивость тиамин-киназы при ее явном промышленном назначении определила необходимость поиска путей стабилизации фермента введением в водонерастворимые матрицы.
Материалы и методы
Выделение и очистку тиаминкиназы проводили описанным ранее методом [3]. Ферментативную активность определяли по методу [10] с модификациями, описанными в работе [3]. Количество образовавшегося в тиа-минкиназной реакции тиаминпирофосфата находили при помощи апопируватдекарбоксилазы [13]. Активность рекомбинированной в течение 30 мин при 20 °C и рН 6,8 холопируватдекарбоксилазы, пропорциональную содержанию тиаминпирофосфата в пробах, определяли по убыли НАДН в присутствии алкогольдегидрогеназы [11]. Калибровочный график строили с хроматографически чистым препаратом тиаминпирофосфата. Белок определяли по методу Брэдфорд [8] и спектрофотометрически по поглощению при 280 нм. Удельную активность ти-аминкиназы выражали в нмоль тиаминпирофосфата, образовавшегося за 1 ч при 40 °C в расчете на 1 мг белка ферментного препарата.
Для иммобилизации использовали модифицированный метод Кирстена и Бьюка [5]. Осторожно смешивали равные объемы (по 1 мл) раствора альгината натрия (в связи с тем, что проводилась иммобилизация фермента, а не клеток, была взята максимально возможная концентрация альгината — 5% раствор) и раствора фермента. Полученную смесь капали с высоты около 20 см из шприца емкостью 2 мл с иглой диаметром 1 мм в избыток раствора СаС12 различной концентрации. При этом соблюдалось соотношение между объёмами смеси фер-
мент-альгинат натрия и раствора СаС12 равное 1: 10. Сформированные гранулы геля альгината кальция, с включённым в них ферментом, оставляли в растворе СаС12 на 20 мин для затвердевания. Полученные частицы подвергали дополнительной инкубации в течение разного периода времени в 0,2 М хлориде кальция, взятом в объёме в два раза меньшем, чем исходный раствор СаС12, использовавшийся для формирования гранул. При промывке и хранении альгинатных гранул применяли раствор, имеющий следующий состав: 0,01 М натрий-ацетатный буфер, pH 5,5, + 0,01 М СаС12.
С целью уменьшения диаметра гранул в смесь фермент / альгинат натрия добавляли этанол в количестве 10% объёма от объёма смеси и исследовали активность препаратов иммобилизованного фермента, полученных с добавлением или без добавления этанола.
Влияние способа иммобилизации на активность иммобилизованного фермента изучали в диапазоне концентраций раствора СаС12, использовавшегося для формирования гранул: 0,25−0,5 М, с шагом 0,05 М, при условии наличия и отсутствия этанола в смеси раствор фермента/ альгинат натрия. При этом рассчитывалась сохранённая активность (%), равная отношению активности иммобилизованного фермента к активности свободного, взятого для иммобилизации. Определялась также активность (%), потерянная при иммобилизации с не включившимся в гранулы белком, в растворах, использовавшихся для формирования, стабилизации и промывки гранул. Одновременно рассчитывалась потерянная только при иммобилизации активность (%), без учёта активности, утраченной с не включившейся в гранулы тиаминки-назой. За 100% принималась общая активность свободного фермента, взятого для иммобилизации.
Дополнительная стабилизация гранул осуществлялась добавлением к смеси фермент / альгинат стабилизирующих агентов: полиэтиленгликоля разной концентрации, бычьего сывороточного альбумина (1%), глутарового диальдегида (2,5%) и /или феррицианида калия (0,02 М).
Операционную стабильность иммобилизованной тиаминкиназы определяли по числу реакционных полу-циклов. Когда количество образовавшегося продукта реакции достигало 50%, реакционную смесь декантировали, гранулы отмывали 0,01 М натрий-ацетатным буфером, рН 5,5, содержащим 0,01 М СаС12, и использовали для повторного определения активности. Концентрацию белка в гранулах находили как разность между количеством белка, взятым до иммобилизации, и количеством его в растворах, в которых обрабатывались гранулы. Для полноты элюции макромолекул из гранул последние разрушали с помощью гомогенизатора в 0,1 М натрий-аце-татном буфере, рН 5,5, с дальнейшим центрифугированием смеси в течение 7 мин при 7000 об/мин и определением количества белка в супернатанте. Результаты прямого и косвенного методов экстракции тиаминкиназы практически совпадали.
Приведенные в работе данные рассчитаны при уровне значимости 0,05 для не менее трёх измерений. Обработка и построение графических зависимостей осуществлялась с помощью программы «Microsoft Excel».
Результаты и их обсуждение
Результаты по изучению зависимости активности иммобилизованных препаратов частично очищенного и высокоочищенного фермента от концентрации СаС12 и наличия этанола приведены в таблице 1. Известно, что увеличение поверхности катализатора при проведении гетерогенного катализа и, в частности, катализа иммоби-
лизованными ферментами, часто влияет на скорость реакции. Как видно из таблицы, внесение этанола при проведении иммобилизации в количестве 10% от объёма смеси фермент/альгинат натрия вызвало уменьшение объёма гранул, что наблюдалось как в случае частично очищенного, так и высокоочищенного препарата фермента. Однако активность иммобилизованной тиамин-киназы увеличивается только в случае частично очищенного фермента. Меньший размер гранул обеспечивает лучший доступ субстрата к ферменту — эффективность использования биокатализатора повышается. Снижение активности препарата высокоочищенной тиаминкиназы в присутствии этанола может быть следствием большей чувствительности гомогенного фермента к денатурирующему действию органического реагента.
Увеличение концентрации матричного раствора СаС1 (табл. 1) также вызывает уменьшение объёма гранул, но после концентрации 0,4 М для частично и 0,35 М для высокоочищенной тиаминкиназы активность иммобилизованного фермента практически не возрастает.
Таблица 1 — Влияние концентрации СаС12 и наличия этанола на активность иммобилизованных препаратов частично очищенной (ЧО) и высокоочищенной (ВО) тиаминкиназы
[СаС12], М Наличие этанола Объем гранул, мкл Активность иммобилизованной тиаминкиназы, нмоль/(ч-мг)
ЧО ВО ЧО ВО
0,25 — 12,0±0,3 11,7±0,1 72,6±2,1 310,2±3,4
0,25 + 11,4±0,4 11,3±0,1 84,0±2,9 245,0±4,7
0,3 — 11,5±0,2 11,0±0,1 79,1±6,7 391,8±3,9
0,3 + 11,2±0,4 10,1±0,2 106,3±5,0 357,2±4,4
0,35 — 11,6±0,3 10,3±0,1 119,0±6,2 604,0±5,0
0,35 + 10,9±0,2 9,9±0,1 141,7±7,4 556,1±2,8
0,4 — 10,0±0,1 9,0±0,2 133,2±3,8 541,0±4,3
0,4 + 9,1±0,2 8,3±0,1 158,6±6,7 398,4±2,3
0,5 — 9,0±0,2 8,4±0,1 80,4±4,8 476,2±8,9
0,5 + 8,3±0,2 8,0±0,1 96,1±2,4 403,1±6,2
Таким образом, исходя из полученных данных, лучшими вариантами иммобилизации является использование в качестве матричного раствора 0,4 М хлорида кальция с добавлением этанола в смесь альгинат/фермент для частично очищенного препарата фермента, а для высокоочищенного — 0,35 М хлорида кальция при отсутствии этанола.
Таблица 2 — Влияние условий иммобилизации тиаминкиназы на эффективность способа иммобилизации
[СаС12], М Наличие этанола Количество иммобилизованного белка, %, + Сохранённая активность, % Потерянная активность, %, ++
0,2 — 14 12 47
0,2 + 9 15 40
0,25 — 30 39 36
0,25 + 24 44 38
0,35 — 26 42 31
0,35 + 22 43 29
0,4 — 23 45 33
0,4 + 20 49 26
0,5 — 36 8 37
0,5 + 32 15 32
Примечание: за 100% принято количество белка, взятое для
иммобилизации- ++без учёта активности, потерянной с не включившимся в гранулы белком.
л
и
§
§
0 12 3 4 5 6
Время, сут
Рисунок 1 — Стабильность иммобилизованного (1 — без этанола, 2 — с этанолом) препарата частично очищенной тиаминкиназы при хранении
При определении эффективности способа иммобилизации было установлено, что наименьшее влияние на активность иммобилизованного фермента оказывает иммобилизация в гранулах, образованных с использованием 0,4 М СаС12 и этанола (табл. 2). В этих условиях наблюдается наименьшая доля потерянной при иммобилизации активности, при наибольшей доле сохранённой. Количество иммобилизованного белка непосредственно влияет на эффективность способа иммобилизации. После достижения определённой концентрации белковых молекул внутри гранулы геля увеличение количества молекул фермента начинает лимитировать доступ субстрата к активным центрам. В результате процент сохранённой при иммобилизации активности будет уменьшаться, что и наблюдалось в нашем случае при начальной концентрации матричного раствора хлорида натрия 0,4 М.
Для наиболее оптимальных вариантов иммобилизации были проведены исследования по стабильности иммобилизованных препаратов тиаминкиназы. Как оказалось, добавление этанола, кроме увеличения активности, способствует увеличению стабильности при хранении иммобилизованных препаратов частично очищенного фермента (рис. 1).
Обнаружено также, что дополнительная инкубация полученных гранул в 0,2 М растворе хлорида кальция ведет к увеличению операционной стабильности в зависимости от времени инкубации (табл. 3). Под операционной стабильностью понималась возможность многократно-
Таблица 3 — Зависимость операционной стабильности гранул от времени дополнительной инкубации в 0,2 М СаСЬ
Время Исходная активность Остаточная активность, %
инкубации, мин тиаминкиназы, нмоль/(ч-мг) во втором полуцикле в третьем полуцикле
[СаС12], нач. = 0,35 М, ВО тиаминкиназа, без этанола
0 601,7 ± 2,6 19 4
20 570,3 ± 2,1 25 7
30 534,0 ± 1,9 36 11
45 172,1 ± 7,4 44 11
[СаС12], нач. = 0,4 М, ЧО тиаминкиназа, с этанолом
0 79,0 ± 2,4 30 6
20 76,9 ± 2,7 54 10
30 71,0 ± 1,8 62 15
45 32,7 ± 4,3 65 16
Примечание: р & lt- 0,05 по сравнению с контролями без инкубации.
го использования гранул. Начальную активность принимали за 100% (активность первого цикла), операционную стабильность иммобилизованного препарата оценивали в процентах от начальной.
При инкубации как частично очищенной, так и высо-коочищенной иммобилизованной тиаминкиназы в течение 30 мин в 0,2 М СаС12 остаточная активность во 2-м полуцикле повышается почти вдвое, при этом уменьшение исходной активности не превышает 15%.
Исходная активность иммобилизованной тиаминки-назы с увеличением продолжительности инкубации в 0,2 М СаС12 постепенно снижается, а при инкубации в течение 45 мин ее уменьшение весьма значительно — для высокоочищенного препарата фермента в 3,1 раза, по сравнению с таковой при инкубации в течение 30 мин, для частично очищенной тиаминкиназы — в 2,2 раза. Сохранение 65% активности гранул дает возможность использовать их ещё раз, что важно для практического применения (табл. 3).
Таблица 4 — Активность иммобилизованной тиаминкиназы в присутствии стабилизирующих агентов
Стабилизатор Активность, % Стабильность, %
— 100 59
К3^е (С^] 127 31
БСА 102 56
ПЭГ 104 43
БСА + К3ре (С№)6] 107 42
ГА 88 37
ГА + К3^е (С№Ы 131 18
Примечание: Стабильность иммобилизованного препарата определялась
по количеству потерянной активности после первого цикла использования
Известно, что бычий сывороточный альбумин (БСА), полиэтиленгликоль (ПЭГ), феррицианид калия и глута-ровый диальдегид (ГА) являются стабилизаторами некоторых белков [2]. В таблице 4 приведены данные по влиянию указанных реагентов на активность и стабильность иммобилизованных препаратов тиаминкиназы.
Феррицианид калия увеличивает активность иммобилизованного фермента на 26−30%, по сравнению с гранулами без добавки, при этом во втором цикле использования сохраняется не менее 69% активности. Вероятно, прочный комплексный ион способен образовывать дополнительные координационные связи с молекулой фермента, стабилизируя таким образом его нативную конформацию. Наибольшую устойчивость тиаминкина-за проявляла при комбинированном воздействии на нее феррицианида калия с поперечносшивающим агентом -глутаровым диальдегидом. В этом случае активность оставалась достаточно высокой (около 40% активности к 9 полуциклу).
Гранулы, содержащие БСА и ПЭГ, обладают низкой стабильностью, а активность их изменялась незначительно. При внесении в гранулы с БСА феррицианида калия стабильность препарата возросла на 25% без существенного изменения активности.
Гранулы, содержащие феррицианид и ГА, оказались более устойчивыми и при хранении (рис. 2). Их можно хранить в течение 90 суток с потерей не более 36% активности, в то время как без стабилизатора — только 30 суток.
Исходя из полученных результатов, можно сделать следующие выводы:
— иммобилизация тиаминкиназы в гранулы альгината кальция с внесением в систему феррицианида калия позволяет получать полупромышленные препараты фермента-
Рисунок 2 — Стабильность препаратов иммобилизованной тиаминкиназы, содержащей стабилизирующие белок агенты, во времени.
Препараты тиаминкиназы: 1 — без стабилизирующих агентов- 2 — с феррицианидом калия- 3 — с БСА-
4 — с феррицианидом калия и БСА- 5 — с ГА-
6 — с феррицианидом калия и ГА
— для получения образцов промышленного назначения необходимо более жесткое связывание с матрицей с помощью бифункциональных реагентов, о чём свидетельствуют опыты с глутаровым диальдегидом, или, возможно, включение в полупроницаемые мембраны.
Литература
1. Арцукевич, И. М. Очистка и некоторые свойства тиамин-пирофосфокиназы из печени крыс / И. М. Арцукевич, А. И. Воскобоев // Вопр. мед. химии. — 1977. — Т. 23, № 2. — С. 203−210.
2. Березин, И. В. Иммобилизованные ферменты / И. В. Березин. — М.: Высш. шк., 1987. — 224 с.
3. Воскобоев, А. И. Очистка и характеристика тиаминпиро-фосфокиназы из живых дрожжей / А. И. Воскобоев, Ю. М. Островский // Биоорган. химия. — 1975. — Т. 1, № 10. — С. 1489−1497.
4. Воскобоев, А. И. Биосинтез, деградация и транспорт фосфорных эфиров тиамина // А. И. Воскобоев, И. П. Черникевич. -Минск.: Наука и техника, 1987. — 200 с.
5. Досон, Р. Справочник биохимика / Р. Досон, Д. Элиот, У. Элиот, К. Джонс. — М.: Мир, 1991. — 543 с.
6. Курганов, Б. И. Аллостерические ферменты / Б. И. Курганов. — М.: Наука, 1978. — 248 с.
7. Черникевич, И. П. Влияние субстратов, кофакторов и эффекторов на структуру и динамику тиаминкиназы из пивных дрожжей / И. П. Черникевич, А. А. Маскевич // Биоорган. химия. -1992. — Т. 18, № 4. — С. 509−530.
8. Bradford, M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilising the principle of protein-dye binding / M.M. Bradford // Anal. Biochem. — 1976. -V. 72, № 2. — P. 248−254.
9. Hamada, M. Studies on thiamine pyrophosphokinase from heard muscle / M. Hamada // J. Jap. Biochem. Soc. — 1969. — V41. -P. 837−842.
10. Mano, Y. Studies on enzymatic synthesis of cocarboxylase in animal tissue / Y. Mano // J. Biochem. — 1960. — V. 47. — P. 283−290.
11. Naveke, R. Wirkungsmechanismus von Thiaminpyrophosphat / R. Naveke, H. Holzep // Arch. Mikrobiol. — 1962. — V. 44. — P. 931 0 4.
1 2. Purification of and properties of thiamine pyrophosphokinase from parsle leaf / H. Mitsuda [et al.] // J. Nutr. Sci. Vitaminol. — 1975. — V. 21, № 2. — P. 103−115.
13. Ullrich, J. Yeast pyruvate decarboxylase (2-oxoacid carboxylase, EC 4.1.1. 1). Assay of thyamine pyrophosphate / J. Ullrich // Method. Enzymol. — 1970. — V. 18A. — P. 109−228.
Поступила 10. 02. 10

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой