Биосинтетические характеристики мутантного штамма 2Р-15 в присутствии экзогенных аминокислот

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Биология


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

Вісник Дніпропетровського університету. Біологія. Екологія. — 2008. — Вип. 16, т. 1. — С. 78−83. Visnyk ofDnipropetrovsk University. Biology. Ecology. — 2008. — Vol. 16, N 1. — P. 78−83.
УДК 579. 22+577. 15
И. В. Жерносекова, А. А. Тымчук, А. Г. Понизовцева,
Н. П. Черногор, А. И. Винников
Днепропетровский национальный университет
БИОСИНТЕТИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ МУТАНТНОГО ШТАММА 2Р-15 В ПРИСУТСТВИИ ЭКЗОГЕННЫХ АМИНОКИСЛОТ
Досліджено дію екзогенних амінокислот на прояв біосинтетичної активності рифампіци-ностійкого штаму 2Р-15. Показано, що амінокислоти в оптимальних концентраціях (50, 100, 200 мкг/мл) викликають максимальне збільшення синтезу білка, накопичення біомаси, активності стафілолітичних ферментів і продуктивності стрептоміцету в умовах глибинної ферментації. Всі досліджені амінокислоти забезпечили підвищення стимулювальної активності штаму в 2,0−3,7 раза.
I. V. Zhernosekova, А. А. Tymchuk, А. G. Ponizovtseva,
N. P. Chernogor, А. I. Vinnikov
Dnipropetrovsk National University
BIOSINTHETICAL DESCRIPTION OF MUTANT STRAIN 2Р-15 IN THE PRESENCE OF EXOGENOUS AMINO ACIDS
The effect of exogenous amino acids on the biosynthetical activity of 2P-15 rifampycin -resistant strain was studied. Addition of the amino acids to the medium for the 2P-15 cultivation in the optimal concentrations (50, 100, 200, ^g/ml) entailed the augmentation of a synthesis of protein, biomass, activity of staphylococcus-lytic enzymes and strain’s productivity in the conditions of deep fermentation. All studied amino acids ensure the increase of stimulating activity of the mutant 2P-15 strain 2. 0−3.7 times.
Введение
Коммерческое производство продуктов, которые синтезируются микроорганизмами в результате их жизнедеятельности, является приоритетом традиционной биотехнологии. В последнее время существенно расширился список ценных биотехнологических продуктов, с помощью которых преодолеваются продовольственные, энергетические, сырьевые и экологические проблемы. Для создания высококачественного продукта необходимо наличие высокоактивных культур микроорганизмов — продуцентов биологически активных веществ, получение которых возможно как традиционными методами селекции, пропластированием, так и методами генетической инженерии [3- б- І4- І5].
Известно, что для реализации высокой активности штаммов продуцентов большое значение имеют физико-химические показатели среды, источники питания, экзогенные факторы роста: аминокислоты, пурины, пиримидины, требуемые в малых количествах [І5- І7- 1S]. У многих микроорганизмов потребности в питательных веществах изучены пока недостаточно и их удается культивировать лишь на средах, содержащих сложные природные компоненты, такие как сыворотка крови, жидкость
© И. В. Жерносекова, А. А. Тымчук, А. Г. Понизовцева, Н. П. Черногор, А. И. Винников, 200S 7S
рубца, дрожжевой автолизат или пептоны [4- 16]. Микроорганизмы способны изменять свой обмен в соответствии с изменениями окружающей среды, что открывает возможность для управления их ростом и ферментативной активностью [3- 17].
Применение различных стимуляторов вызывает изменение метаболических процессов у микроорганизмов в сторону увеличения выхода конечного продукта, повышения окислительно-восстановительных процессов, биосинтеза белка и проницаемости клеточных мембран [17- 20]. Особого внимания заслуживают стимуляторы химической природы — ростовые факторы и предшественники синтеза макромолекул, а именно аминокислоты. Так, внесение гистидина и глутаминовой кислоты в среду культивирования грибов — продуцентов пектолитических ферментов — вызывает усиление их роста и активизацию синтеза энзимов [1]. Экзогенный метионин усиливает синтез щелочных и нейтральных экзопротеаз у Acremonium chrysogenum [13], лизин — биосинтез цефалоспорина С у С. aeramonium [26], а также пенициллина у Р. chrysogenum [25], глутаминовая кислота повышает выход тилозина у S. fradiae [21]. Кроме того, аланин и цистеин усиливают в 1,5−3,0 раза рост и накопление белка в мицелии гриба Fusarium [7]. Ауксинообразование у фото- и гетеротрофных бактерий [8- 10- 11] также усиливается под воздействием экзогенных аминокислот. Добавление триптофана в концентрациях 50−200 мкг/мл в среды выращивания культур Sphingomonas sp. 18, Mycobacterium sp. 1, Rhizobium sp. 5 увеличивает образование ауксина (ИУК) в 28, 30 и 34 раза, а к бактериям Rhodococcus sp. 37 и Pseudomonas sp. 24 — в 124 и 103 раза соответственно [19]. Эксперименты in vitro показали, что только некоторые бактериальные культуры могут синтезировать небольшое количество ИУК без добавления экзогенного триптофана, являющегося его метаболическим предшественником [9- 23].
Учитывая, что аминокислоты служат строительными блоками для образования основных компонентов микробных клеток — белков, а также ферментов, способствуя усилению биосинтетических процессов у многих микроорганизмов, целью данной работы было установить влияние экзогенных аминокислот на проявление биосинтетических свойств мутантного штамма стрептомицета 2Р-15.
Материал и методы исследований
Объектом исследования был штамм стрептомицета, устойчивый к рифампици-ну — Streptomyces recifensis var. lyticus 2P-15, синтезирующий комплекс бактериоли-тических ферментов и стимулятор роста [6- 20]. Исследования литической активности продуцента проводили с использованием музейного штамма S. aureus 209 Р- стимулирующей активности — промышленного штамма C. tropicalis 51. Биосинтетическую активность определяли при глубинном культивировании штамма-продуцента на ферментационной среде на протяжении 72 ч при +28°С, в рабочем объеме среды 50 мл и частоте вращения качалки 220 об. /мин. [6]. Массу мицелия стрептомицета, отфильтрованного, отмытого 5% раствором ТХУ и высушенного при +105°С до постоянного веса, определяли весовым методом и выражали в мг/мл. В работе использовали аминокислоты фирмы «Реахим», которые добавляли после стерилизации до конечной концентрации 50, 100, 200 мкг/мл. Стафилолитическую активность определяли турбидиметрическим методом Isono [4] и выражали в ед. /мл или ед. /мг белка. Белок в пробах определяли методом Bradford [28].
При исследовании ростстимулирующей активности продуцента фильтраты культуральной жидкости (КЖ) предварительно инактивировали автоклавированием. Исследуемые растворы, разведенные 1: 10, вносили в стерильную синтетическую сре-
среду Ридера из расчета 1% от объема. Инокулятом служила суточная агаризованная культура дрожжей, приготовленная по стандарту мутности 10. О ростстимулирую-щей активности штамма 2Р-15 судили по величине прироста биомассы дрожжей в сравнении с контролем, которую выражали в %. Накопление биомассы дрожжей оценивали оптическим методом на КФК 2 МП при 590 нм в кювете шириной 0,5 см. Стимулирующую активность рассчитывали по формуле, предложенной Н. П. Черно-гор [20], и выражали в ед. /мл. Все эксперименты проводили в трех повторностях и обрабатывали статистически.
Результаты и их обсуждение
Синтез белка штаммом 2Р-15 в присутствии треонина (табл. 1) увеличился при действии всех исследуемых концентраций, достигнув максимального показателя 156% к контролю. Показатели синтеза белка при минимальной (50 мкг/мл) и максимальной (200 мкг/мл) концентрации кислоты также превысили контроль, но в меньшей степени, и составили 147 и 139% соответственно. Очевидно, концентрация треонина 100 мкг/мл является оптимальной для стрептомицета, вызывая самое большое увеличение биосинтеза белка. Из данных литературы известно, что треонин не формирует аминокислотного фонда в микробной клетке, а немедленно сразу после проникновения включается в белок [2]. В присутствии ароматической аминокислоты триптофана биосинтез белка у продуцента стал выше контрольного уровня на 27% только при минимальной ее концентрации. Известно, что ароматические аминокислоты полностью в неизменном виде используются микробной клеткой на биосинтетические цели [2].
Таблица 1
Биосинтетические характеристики штамма 2Р-15 в присутствии аминокислот
Концентрация, мкг/мл Белок Биомасса Литическая активность Удельная активность Продуктив- ность Удельная скорость роста, ц
мг/мл % от К мг/мл % от К ед/мл % от К ед. /мг коэфф. разл. ед. /мг % от К -1 ч коэфф. разл.
Контроль (без аминокислоты) 0,33 100 11,5±0,06 100 2800±148 100 8485 1,0 243,5 100 0,16 1,0
Трипто- фан 50 100 200 0,421 127 11,6±0,08* 101 4000±224 143 9501 1,1 344,8 141 0,16 1,0
0,289 87 11,6±0,06* 101 3733±96 133 12 916 1,5 321,8 132 0,16 1,0
0,296 90 10,0±0,10 87 2600±132* 93 8783 1,0 260,0 107 0,14 0,9
Трео- нин 50 100 200 0,484 147 10Д±0,10 89 3733±101 133 7713 0,9 366,0 150 0,14 0,9
0,515 156 15,0±0,08 130 3733±98 133 7248 0,8 248,9 102 0,21 1,3
0,460 139 16,6±0,12 144 3200±82* 114 6956 0,8 192,8 79 0,23 1,4
Глута- миновая к-та 50 100 200 0,242 73 13,2±0,05 115 3466±86 124 14 322 1,7 262,6 108 0,18 1,1
0,234 71 12,4±0,08 108 3466±82 124 14 812 2,1 279,5 115 0,17 1,1
0,265 80 24,4±0,14 212 3200±79* 114 12 075 1,4 131,1 54 0,34 2,1
Арги- нин 50 100 200 0,234 71 14,2±0,13 123 4533±183 162 19 371 2,3 319,2 131 0,20 1,2
0,289 87 22,6±0,10 196 3200±96* 114 11 073 1,3 141,6 58 0,31 1,9
0,242 73 10,8±0,06 94 4000±160 143 16 529 1,9 370,4 152 0,15 0,9
Примечание: * -р & lt- 0,05.
Присутствие аминокислот (глутаминовой, аргинина) не вызвало увеличения синтеза белка у мутантного штамма 2Р-15 ни в одной из исследуемых концентраций. Их показатели ниже контрольного уровня (колебались в пределах 71−87%). Это объясняется тем, что глутаминовая кислота очень быстро образует внутриклеточный пул, но он только частично расходуется для биосинтеза, а аргинин образует относи-
тельно большой пул, который сохраняется в течение очень большого промежутка времени без каких бы то ни было изменений [2].
Все исследуемые аминокислоты обеспечили увеличение накопления биомассы штаммом на разных уровнях. Присутствие экзогенного треонина способствовало повышению биомассы на 30−44% при соответствующих концентрациях 100 200 мкг/мл. Это связано с повышением удельной скорости роста ц в 1,3 и 1,4 раза по сравнению с контролем. Глутаминовая кислота и аргинин увеличили накопление биомассы штамма до максимального значения 212 и 196% соответственно, где ц превысила контроль в 2,1 и 1,9 раза. Аминокислота триптофан не вызывала активного накопления биомассы, так как ц колебалась в пределах контрольного уровня.
Анализируя активность стафилолитических ферментов, синтезируемых продуцентом, следует отметить, что все исследуемые аминокислоты вызывают повышение активности стафилолизинов в пределах от 114 до 162%. Максимальный показатель активности выявлен в присутствии аргинина в концентрации 50 мкг/мл, что и обеспечило самый высокий показатель удельной активности на уровне 19 371 ед. /мг. Известно, что синтез ферментов усиливается в присутствии экзогенных аминокислот, вносимых в питательную среду для культивирования плесневых грибов, вследствие непосредственного включения их в молекулу активного белка. Авторы полагают, что «аминокислоты-стимуляторы» компенсируют недостающие свободные внутриклеточные аминокислоты, необходимые для синтеза фермента [17].
Поскольку в большинстве опытов стабильные биосинтетические характеристики штамма 2Р-15 были получены нами с использованием экзогенного треонина, представляло интерес выяснить возможность замены в среде культивирования продуцента источника азотного питания, а именно соли МНМО3 на треонин в концентрации 100 мкг/мл. Из литературы известно, что аминокислоты служат вторыми по значению питательными субстратами после сахаров и являются для бактерий источниками углерода, азота и энергии [5- 16]. Замена источника азота на треонин привела к снижению всех исследуемых биосинтетических характеристик мутантного штамма 2Р-15 (табл. 2).
Таблица 2
Биосинтетические характеристики штамма 2Р-15 при замене источника азотного питания
Вариант опыта Белок Биомасса Литическая активность Удельная активность Продуктив- ность
мг/мл % от К мг/мг % от К ед/мл % от К ед. /мг коэфф. разл. ед. /мг % от К ч-1% от К
Контроль 0,46 100 9,6±0,04 100 2089±70,81 100 4541 1,0 217,6 100 0,13 100
Опыт Л 0,104 22 8,58±0,03* 89 1044±34,66* 50 10 038 2,2 122,0 56 0,12 92
Примечание: Л — среда с заменой источника азота- * -р & gt- 0,05.
Уровень белка был снижен на 78%, накопление биомассы стрептомицетом не превышало контрольного уровня и достигло лишь 89%, активность стафилолитичес-ких ферментов, лизирующих клетки стафилококка, уменьшилась в 2 раза. Наблюдалось также снижение продуктивности штамма на 44% на фоне уменьшения удельной скорости роста клеток стрептомицета на 8%. Таким образом, замена источника азотного питания (КНКОз) аминокислотой треонином, которая привела к снижению всех биосинтетических параметров продуцента, нецелесообразна, так как эта среда оказалась несбалансированной по азотному питанию. Подобное изменение В. Г. Де-бабов объясняет при переносе клеток с полноценной среды на минимальную, когда
одновременно с замедлением скорости роста наблюдается резкое уменьшение синтеза стабильных типов РНК (рРНК и тРНК), при этом не возрастает активность ряда ферментов (триптофансинтетазы, гомосериндегидрогеназы, треаниндезаминазы) биосинтеза аминокислот, что очевидно, является причиной задержки роста [3].
При исследовании стимулирующей активности штамма 2Р-15 на клетках Candida tropicalis, получено увеличение оптической плотности (ОД) клеток дрожжей при внесении КЖ в концентрации 1%. Максимальный прирост биомассы дрожжей (А, %) в присутствии аргинина составил 282% (табл. 3).
Таблица З
Стимулирующая активность штамма 2Р-15 на клетках Candida tropicalis
Вариант опыта Конц. КЖ, % Оптическая плотность, ОД 590 нм Стимулирующая активность Белок Удельная стимулирующая активность
X±m % от К Д% контр. КЖ, % ед. /мл % от К мг/мл ед. /мг коэфф. различия
Контроль без КЖ 0 0,17i0,03 100 0 — 0 — - - -
КЖ без аминокислот 1 0,30i0,08* 176 76 100 2530 100 0,33 7666 1,0
КЖ + триптофан 50 1 0,43i0,10* 253 153 143 5100 201 0,42 12 143 1,6
КЖ + треонин 100 1 0,46i0,05 270 170 153 5670 224 0,52 10 904 1,4
КЖ + глутаминовая кислота 100 1 0,39i0,05 229 129 130 4300 170 0,23 18 696 2,4
КЖ + агринин 100 1 0,65i0,03 382 282 217 9400 371 0,29 32 414 4,2
Примечание: * -р & lt- 0,05.
Уровень стимулирующей активности продуцента в контроле (КЖ без аминокислоты) достиг 2530 ед. /мл, в присутствии экзогенного триптофана — 5100, треонина -5670, глутаминовой кислоты — 4300, аргинина — 9400 ед. /мл. Увеличилась также удельная стимулирующая активность в 1,4−4,2 раза по сравнению с контролем.
Выводы
Внесение экзогенных аминокислот в среду выращивания штамма 2Р-15 положительно повлияло на биосинтетическую активность продуцента. Активно увеличился синтез белка на 56% при внесении треонина, выход биомассы стрептомицета — на 112% в присутствии глутаминовой кислоты, активность стафилолизинов — на 62% при добавлении аргинина, продуктивность штамма — на 50−52% в присутствии треонина и аргинина. Внесение триптофана повысило стимулирующую активность продуцента в 2,0 раза, треонина — в 2,2, глутаминовой кислоты — в 1,7, аргинина — в 3,7 раза.
Библиографические ссылки
1. Астапович Н. И. Нуклеотидный фонд и метаболизм микробной клетки. — Минск, 1979. -150 с.
2. Гершанович В. Н. Транспорт аминокислот, полипептидов и органических кислот у бактерий. — М.: Медицина, 1977. — 184 с.
3. Дебабов В. Г. Современные методы создания промышленных штаммов микроорганизмов / В. Г. Дебабов, В. А. Лившиц // Биотехнология. — М.: Высшая школа, 1988. — Т. 2. — 208 с.
4. Джавец Э. Руководство по медицинской микробиологии / Э. Джавец, Д. А. Мельник,
Э. А. Эйдельберг. — М.: Медицина, 1982. — Т. і. — 368 с.
5. Елинов Н. П. Химическая микробиология. — М.: Высшая школа, 1989. — 448 с.
6. Жерносекова И. В. Изменчивость продуцента литических ферментов Streptomyces re-
cifensis var. lyticus и его селекция. Дис. … канд. биол. наук. — К., 2002. — 150 с.
7. Закордонец Л. А. Влияние аланина и цистеина на образование биологически активных веществ Fusarium sp. / Л. А. Закордонец, С. М. Супрун // Микробиол. журн. — 1983. -Т. 45, № і. — С. 39−43.
8. Иванова Е. Г. Аэробные метилобактерии синтезируют ауксины / Е. Г. Иванова, И. В. Доронина, Ю. А. Троценко // Микробиология. — 200і. — Т. 70, № 4. — С. 452−458.
9. Кравченко Л. В. Роль корневых экзометаболитов в интеграции макроорганизма с растениями. Автореф. дис. … д-ра биол. наук. — М., 2000. — 51 с.
10. Мишке И. В. Микробные фитогормоны в растениеводстве. — Рига: Зинатне, 1988. — 151 с.
11. Мордухова Е. А. Синтез фитогормона индол-3-уксусной кислоты ризосферными бактериями рода Pseudomonas / Е. А. Мордухова, И. П. Скворцова, В. В. Кочетков // Микро-
биология. — 1991. — Т. 60, № 3. — С. 494−500.
12. Муронец Е. М. Синтез индолилуксусной кислоты сапрофитной ассоциативной бактерией Agrobacterium radiobacter / Е. М. Муронец, И. В. Белавина, Т. И. Митронова // Микробиология. — 1997. — Т. 66, № 4. — С. 506−513.
13. Новак М. И. Регуляция биосинтеза цефалоспорина С у штаммов Acremonium chry-sogenum // Проблемы изыскания и биотехнологии новых антибиотиков. — Пущино, 1982. — С. 23.
14. Прист Ф. Внеклеточные ферменты микроорганизмов. — М.: Мир, 1987. — 117 с.
15. Промышленная микробиология / Под ред. И. С. Егорова. — М.: Высшая школа, 1989. — 688 с.
16. Современная микробиология. Прокариоты / Под ред. Й. Ленгелера. — М.: Мир, 2005. -Т. і. — 656 с.
17. Стимуляция жизнедеятельности микроорганизмов и вирусов / Под ред. М. Х. Шигае-вой. — Алма-Ата: Иаука, 1986. — 184 с.
18. Тимаков В. Д. Микробиология. — М.: Медицина, 1983. — 512 с.
19. Цавкелова Е. А. Образование ауксинов бактериями, ассоциированными с корнями орхидей / Е. А. Цавкелова, Т. А. Чердынцева, А. И. Иетрусов // Микробиология. — 2005. -Т. 74, № і. — С. 55−62.
20. Чорногор Н. П. Дослідження рістстимулюючих властивостей лізоензимного препарату Streptomyces recifensis variant lyticus. Автореф. дис. … канд. біол. наук. — К., 1998. — 20 с.
21. Штейман Б. Р. Влияние некоторых аминокислот и других соединений на биосинтез тирозина / Б. Р. Штейман, Е. А. Середенко, А. М. Макухина // Проблемы изыскания и биотехнологии новых антибиотиков. — Пущино, 1982. — С. 36−37.
22. Bradford M. M. A rapid and sensitive method for the guantitation of microgram guantities of protein utilizing the principle of protein-dye-binding // Anal. Biochem. — 1976. — Vol. 72 і. -P. 1117−1123.
23. Fallik E. Morphology and physiology of plant roots associated with Azospirillum / E. Fallik, Y. Okon // Ed. V. Okon. — London: C. R. C. — 1994. — P. 77−86.
24. Isono M. Bacteriolytic enzyme and process for the production there of. Pat. 3 649 454 USA, C 12 K 1/06 / M. Isono, T. Takahashi. Y. Yamadzaki. — Pat. 1004. 72.
25. Luengo J. M. Lisine regulation of penicillin biosinthesis in low producing and industrial strains of Penicillium chrisogenum / J. M. Luengo, G. Revilla // J. Gen. Microbiol. — 1979. — Vol. 115. -P. 207−2і і.
26. Menta R. Lysine stimulation of cephalosporin C synthesis in C. aeramonium / R. Mehta, J. L. Speth, C. H. Nach // Eur. J. Appl. Microb. and Biotech. — 1979. — Vol. 8. — P. 177−180.
Надійшла до редколегії l5. 04. 2007

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой