Обоснование возможности детоксикации кормов, контаминированных микотоксинами, с применением озон/nо-технологий

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Сельскохозяйственные науки


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ ОМСКИЙ НАУЧНЫЙ ВЕСТНИК № 1 (118) 2013
*
Заключение. Таким образом, при гистологическом исследовании эндометрия коров с клиническими признаками хронического катарального, катарально-гнойного и гнойного эндометрита, были установлены патоморфологические изменения, свидетельствующие о различной степени выраженности воспалительного процесса в эндометрии. Так, при хроническом катаральном эндометрите доминировали признаки атрофического катара, характеризующегося пролиферацией фибробластов и фиброцитов с образованием коллагеновых волокон, атрофией или гипертрофией маточных желез, уменьшением просвета артерий и отеком их стенки и спадением венозных сосудов эндометрия.
При хроническом катарально-гнойном эндометрите, кроме признаков хронического катарального воспаления, в эссудате и поверхностном слое эндометрия наблюдалось большое количество нейтро-филов.
Для хронического гнойного эндометрита характерна инфильтрация поверхностного слоя эндометрия нейтрофилами, атрофические процессы в большинстве маточных желез и наличие нейтрофи-лов их в просветах.
Библиографический список
1. Гончаров, В. П. Профилактика и лечение гинекологических заболеваний коров / В. П. Гончаров, В. А. Карпов. — 2-е изд., перераб. и доп. — М.: Росагропромиздат, 1991. — С. 129−130.
2. Жаров, А. В. Патоморфология болезней мочеполовой системы / А. В. Жаров, Е. Н. Сковородин. — Уфа: БашГАУ, 2005. — 79 с.
3. Семченко, В. В. Гистологическая техника / В. В. Семчен-ко, С. А. Барашкова. — Омск, 2003. — 25 с.
ЕПАНЧИНЦЕВА Ольга Степановна, кандидат ветеринарных наук, доцент (Россия), доцент кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства,
Адрес для переписки: semerunenco@ya. ru
Статья поступила в редакцию 25. 02. 2013 г.
© О. С. Епанчинцева
УДК 636 085 Л. К. ГЕРУНОВА
В. В. ПЕДДЕР И. А. СИМОНОВА Т. В. БОЙКО М. В. НАБОКА Е. В. НАДЕЙ
Омский государственный аграрный университет им. П. А. Столыпина
ООО «Научно-производственное предприятие
«Метромед», г. Омск
ОБОСНОВАНИЕ ВОЗМОЖНОСТИ ДЕТОКСИКАЦИИ КОРМОВ, КОНТАМИНИРОВАННЫХ МИКОТОКСИНАМИ, С ПРИМЕНЕНИЕМ ОЗОН/ЫО-ТЕХНОЛОГИЙ
Авторами проведены исследования по изучению детоксицирующей активности озон/ЫО-содержащей газовой смеси при обработке растворов стандартных образцов и кормов, содержащих микотоксины. В опытах in vitro установлено разрушение афлатоксина B1, дезоксиниваленола, охратоксина, зеараленона, Т-2 токсина при воздействии озон/ЫО-содержащей газовой смеси с концентрацией озона 3,5−4 мг/л в течение 40 минут. В опытах на животных подтверждено снижение негативного влияния обработанных кормов на организм животных.
Ключевые слова: микотоксины, корма, озон/NO газовая смесь.
Реализация стратегии устойчивого увеличения производства мяса и иных продуктов животного происхождения в снабжении населения этим видом сельскохозяйственной продукции является приоритетной целью развития АПК России [1]. Основой
ведения экономически эффективного животноводства является создание качественной кормовой базы. При этом большое внимание уделяется продовольственной безопасности страны и в частности обеспечению населения продуктами питания, не
содержащими опасных для здоровья человека токсикантов, среди которых особое место занимают микотоксины, снижающие питательную ценность продукции растениеводства и вызывающие тяжелые заболевания людей и животных.
Проблема микотоксикозов остается актуальной во всех странах мира. Одним из путей её решения в животноводстве является разработка методов детоксикации кормов при сохранении их питательной ценности.
Существующие технологии обеззараживания кормов — физические (очистка, вымачивание, промывание, нагревание, растворение) — химические (окисление, обработка бисульфатом, аммиаком, формальдегидом и т. д.), биологические (воздействие ферментами) — физико-химические — сорбционные (адсорбция алюмосиликатами, бентонитами, цеолитами и т. д.) — трудоёмки, недостаточно эффективны и часто небезопасны для окружающей среды, животных и человека [2]. Поэтому поиск более совершенных способов разрушения микотоксинов в кормах в процессе долговременного хранения с максимально возможным сохранением их питательной ценности и безопасности для животных является важной задачей профилактической токсикологии.
Перспективным направлением этого поиска является разработка озонных технологий, например, с применением озон0-содержащих газовых смесей, включающих озон и оксид азота II (далее — N0), как наиболее технологически и экономически оправданных.
Обоснованием применения озона и N0 для целей детоксикации кормов, контаминированных микотоксинами, является возможность сохранения их питательных свойств и последующая сохраняемость кормов с минимизацией в них остаточных количеств потенциально опасных веществ. Многие исследователи отмечали специфические свойства озона и N0, явившиеся основой создания ряда технологий обеззараживания кормов [3−10 и др.]. В основе механизма действия озона на биообъекты лежат высокоактивные процессы (рис. 1), протекающие параллельно друг другу, что в условиях сочетанной контаминации кормов обеспечивает их качественную детоксикацию.
Монооксид азота (N0) является уникальной сигнальной молекулой, модулирующей множество физиологических процессов на молекулярном, клеточном и организменном уровнях. N0 участвует в деструкции и метаболизме ферментов, содержащих железо, кобальт, марганец, цинк [5].
Благодаря способности N0 вступать в реакции комплексообразования с металламие, Со, №, Мп, Zn) с образованием металлоорганических соединений [Ме0)п]т+ и инактивировать Fe-содержащие ферменты, происходит подавление и гибель патогенных микроорганизмов, разрушение совместно с озоном продуцируемых ими токсинов. Реакция N0 с анионом супероксида обусловливает образование сильнейшего окислительного агента-пероксинитри-та, выступающего в качестве интегрального звена, объединяющего две системы высокоактивных низкомолекулярных агентов0 и активных форм кислорода [6].
Известно [3−10 и др. ], что озон0-содержащие вещества находятся в разных фазовых состояниях: в виде озон0-содержащей газовой смеси, озон/ N0-содержащего физиологического раствора, озо-нид0-содержащей масляной эмульсии типа «масло в воде», озонид0-содержащего растительного
ОЗОН
Стерилизация
Дезинфекция
Окисление
Прямое Непрямое Катализ Озонолиз
окисление окисление
Рис. 1. Схема процессов, протекающих при взаимодействии озона с биообъектами
масла, являющихся азеотропными, т. е. ведущими себя как биологически чистые и совместимые с организмом вещества, одновременно воздействующие на многие звенья патогенеза заболеваний, вызываемых патогенными микроорганизмами, плесневыми грибами и продуцируемыми ими токсинами. Они инициируют выраженный бактерицидный, фунгицидный, вирулицидный, детоксицирующий, а также вазодилатирующий, антиоксидантный, иммунокорригирующий, оксигенирующий, антигипоксиче-ский и другие эффекты. Являясь высокоактивными детоксикантами, озон^О-содержащие вещества, прежде всего в виде озон^О-содержащей газовой смеси, широко используются в разных отраслях народного хозяйства и, прежде всего, в медицинской инфектологии, биотехнологии и АПК.
Однако вопросы достижения качественной детоксикации кормов, контаминированных микотоксинами, длительность сохранения эффекта детоксикации, влияние детоксицированных озон/NO-содержащими газовыми смесями кормов на организм животных остаются открытыми.
Цель работы — установить детоксицирующую активность озон^О-содержащих газовых смесей, используемых при озонной технологии обработки кормов, содержащих микотоксины.
Материалы и методы. Экспериментальная работа проведена в химико-токсикологическом отделе Омской областной ветеринарной лаборатории, научной лаборатории кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства ОмГАУ им. П. А. Столыпина совместно с Сибирским НИИ Биомедицинских технологий и приборостроения при НПП «Метромед» (г. Омск).
Объектами исследования in vitro являлись стандартные растворы микотоксинов: ГСО 7936−2001 аф-латоксин В1, ГСО 7943−2001 зеараленон, ГСО 79 422 001 Т-2 токсин и ГСО 7941−2001 охратоксин, ГСО 7939−2001ДОН — как аналоги природных, наиболее часто встречающихся на практике микотоксинов, контаминирующих корма. Первоначально готовили растворы вышеуказанных токсинов с концентрациями: 0,1- 0,25 и 1 мг/мл, а затем разливали их по 20 мл в пробирки. Данные пробирки барбатировались озон^О-содержащей газовой смесью в течение
3 и 40 минут при концентрациях озона 3,5 — 4 мг/л и NO — 0,65 мкг/л. Результаты опыта оценивались в трех параллелях и в трех повторностях.
В производственных условиях отбирали образцы гранулированного концентрированного корма (в виде проницаемых капиллярно-пористых гранул), предназначенного для кормления свиней, скармливание которого привело к заболеванию и гибели значительного числа животных [11]. Санитарномикологический анализ корма проводили согласно
ОМСКИЙ НАУЧНЫЙ ВЕСТНИК № 1 (118) 2013 ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ ОМСКИЙ НАУЧНЫЙ ВЕСТНИК № 1 (118) 2013
*
Таблица 1
Содержание микотоксинов в растворах до и после их обработки озон^О-содержащей газовой смесью с концентрацией озона 3,5−4 мг/л, п=6
Методическим указаниям по санитарно-микологической оценке и улучшению качества кормов [12]. После органолептического анализа определяли интегральную токсичность корма на инфузориях стилонихиях. Выделение микроскопических грибов проводили путём посева на среду Чапека. Методами макро- и микроскопии определяли родовую и видовую принадлежность выросших грибов. Количественное определение афлатоксина B1 (AFB1), дезоксиниваленола (DON), охратоксина (OTA), зе-араленона (ZEA), Т-2 токсина (T-2) осуществляли методом иммуноферментного анализа при помощи тест-систем Romer Labs, Inc® Methods (Сингапур) и методом высокоэффективной жидкостной хроматографии при помощи жидкостного хроматографа «Хромос ЖХ-301».
Детоксицирующее действие озон^О-содержа-щей газовой смеси изучали на мышах-самцах (n = 5) массой 24,3±1,5, которым перорально вводили стандартные растворы микотоксинов, обработанные указанной смесью с концентрацией озона 3,5−4 мг/л в течение 40 минут. Контролем служили мыши — аналоги (n = 5), которым перорально вводили стандартные растворы тех же микотоксинов, не подвергая их озонированию. Критерием эффективности детоксикации служила выживаемость мышей в течение 14 дней.
Кроме того, детоксицирующее действие озона в концентрации 3,5 — 4 мг/л изучали путем озонирования озон^О-содержащей газовой смесью части экспериментального образца корма, контаминиро-ванного микотоксинами, в течение 40 минут. Эксперимент проводили на нелинейных белых крысах с массой тела 170 — 215 г, подобранных по принци-
Таблица 2
Содержание микотоксинов в концентрированном корме до и после обработки озон^О-содержащей газовой смесью с концентрацией озона — 3,5−4 мг/л в течение 40 минут
Микотоксины Концентрация, мг/кг
До обработки озон/ NO-содержащей газовой смесью После обработки озон/ NO-содержащей газовой смесью
Афлатоксин В1 0,207 & lt-0,0005
Т-2 токсин 0,46 313 0,5 321
Охратоксин 0,6 013 0,516
Зеараленон 0,47 033 0,0584
ДОН & lt-0,025 & lt-0,025
пу аналогов и разделенных на 2 группы. Животные 1-й группы служили контролем (n = 5) и потребляли гранулированный концентрированный корм, не обработанный озон^О-содержащей газовой смесью. Крысы второй (опытной) группы (n = 5) в течение 30 дней поедали тот же, но обработанный озон^О-содержащей газовой смесью в течение 40 минут гранулированный корм. Оценивали выживаемость животных, клинический статус и морфологические показатели крови. Содержание, кормление и уход за животными, выведение их из эксперимента осуществляли в соответствии с рекомендациями Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых при экспериментальных исследованиях (2003). При патологоанатомическом вскрытии оценивали изменения во внутренних органах крыс контрольной и опытной групп.
Статистический анализ полученных результатов включал методы описательной статистики и проверки статистических гипотез с помощью пакета прикладных статистических программ STATISTICA 6.0. с использованием непарамметрического критерия Mann — Whitney. Различия считали значимыми при р& lt-0,05.
Результаты исследований. Использование озон/ NO-содержащей газовой смеси с концентрацией озона 3,5 — 4 мг/л в течение 3 минут приводит к достоверному снижению концентрации микотоксинов во всех испытуемых растворах (табл. 1). Озонирование озон^О-содержащей газовой смесью стандартных растворов микотоксинов в течение 40 минут способствует полному их разрушению.
Для определения детоксицирующей активности озон^О-содержащей газовой смеси в отношении микотоксинов, содержащихся в кормах, был отобран образец концентрированного гранулированного корма для свиней, явившийся причиной гибели нескольких голов животных в одном из хозяйств Омской области. При микологическом исследовании этого корма, изъятого из кормушек павших свиней, регистрировали рост грибов Aspergillus flavus и Aspergillus ochraceus, а также Penicillium, Fusarium и Mucor. При количественном определении микотоксинов установлено превышение максимально допустимого уровня OTA, ZEA, T-2 токсинов в корме, содержание AF B1 и DON находилось в пределах допустимых концентраций. При проведении биотестирования ацетонового экстракта корма выживаемость инфузорий стилонихий составила 84%, что указывает на отсутствие токсичности исследуемого образца по данному тесту.
Микотоксины Содержание микотоксинов, мг/л
Без обработки озон/NO-содержащей газовой смесью Обработка озон/NO-содержащей газовой смесью, мин
3 40
Афлатоксин В1 0,1±0,0 0,01±0,00** & lt-0,001
0,25±0,0 0,035±0,001** & lt-0,001
1,0±0,0 0,049±0,001** & lt-0,001
Зеараленон 0,1±0,0 & lt-0,020 & lt-0,020
0,25±0,0 0,02±0,00** & lt-0,020
1,0±0,0 0,08±0,00** & lt-0,020
ДОН 0,1±0,0 & lt-0,025 & lt-0,025
0,25±0,0 & lt-0,025 & lt-0,025
1,0±0,0 0,09±0,00** & lt-0,025
Охратоксин 0,1±0,0 0,006±0,001** & lt-0,002
0,25±0,0 0,017±0,001** & lt-0,002
1,0±0,0 0,09±0,00** & lt-0,002
Т-2 токсин 0,1±0,0 & lt-0,015 & lt-0,015
0,25±0,0 0,016±0,001** & lt-0,015
1,0±0,0 0,1±0,0** & lt-0,015
Примечание: **Р& lt-0,0І
Таблица 3
Выживаемость мышей при пероральном введении стандартных растворов микотоксинов до и после их обработки озон^О-содержащей газовой смесью с концентрацией озона — 3,5−4 мг/л в течение 40 минут, п=10
Микотоксины Выживаемость, %
Не обработанные озон/КО-содержащей газовой смесью растворы ГСО в концентрации 0,25 мг/л Обработанные озонЖО-содержащей газовой смесью растворы ГСО в концентрации 0,25 мг/л
Афлатоксин В1 10 100
Т-2 токсин 0 60
Охратоксин 20 70
Зеараленон 0 80
ДОН 0 70
Результаты исследования корма, контаминиро-ванного микотоксинами и обработанного озон0-содержащей газовой смесью с концентрацией озона — 3,5 — 4 мг/л в течение 40 минут, представлены в табл. 2.
Десятикратное снижение концентрации всех исследуемых микотоксинов в корме подтверждает разрушающее действие озона в концентрации 3,5 — 4 мг/л в течение 40 минут.
В эксперименте на мышах установлено повышение процента выживаемости во всех опытных группах животных, которым перорально вводили растворы микотоксинов в концентрации 0,25 мг/л в объеме 2 мл, предварительно обработанные озон/ N0-содержащей газовой смесью в течение 40 минут (табл. 3).
Экспериментальные исследования на крысах, получавших в течение 30 суток корма, контамини-рованные микотоксинами (группа контроля) и те же корма, но предварительно обработанные озон0-содержащей газовой смесью с концентрацией озона — 3,5 — 4 мг/л в течение 40 минут (опытная группа) свидетельствуют о низкой чувствительности крыс к действию микотоксинов. При наблюдении за поведением экспериментальных животных следует отметить плохую поедаемость корма крысами контрольной группы в течение первой недели экспериментального периода. Общее состояние крыс в течение всего периода наблюдения было удовлетворительным, гибели животных не отмечали ни в одной из групп. Динамика массы тела животных контрольной и опытной групп свидетельствует об отсутствии статистически значимых различий. Через трое суток после начала эксперимента и на протяжении всего периода наблюдений у всех крыс контрольной группы отмечали клинические признаки блефарита: веки слипшиеся, с корочками засохшего экссудата.
При анализе морфологических показателей крови у крыс опытной группы регистрировали повышение концентрации гемоглобина на 20%, количества эритроцитов — на 30% по сравнению с показателями контрольной группы животных. В лейкограмме отмечали снижение доли эозинофилов в 2 раза.
При патологоанатомическом вскрытии животных контрольной группы через 30 суток отмечали жировую дистрофию печени (печень светло-коричневого цвета, не увеличена, плотной консистенции).
Почки темно-коричневого цвета, граница коркового и мозгового веществ выражена, капсула снимается легко. Макроскопических изменений со стороны органов желудочно-кишечного тракта не установлено, заслуживает внимания расширение и переполнение слепой кишки у всех животных контрольной группы. Сердце и легкие без видимых патологических изменений.
У животных опытной группы патологоанатомические изменения в печени характеризовались застойной гиперемией с участками жировой дистрофии. Макроскопических изменений в почках, легких, желудке и кишечнике не обнаружено.
Выводы.
1. Проведенные исследования свидетельствуют о возможности достижения надёжной детоксикации корма, контаминированного микотоксинами, путём обработки озон/КО-содержащей газовой смесью.
2. Технологически приемлемыми параметрами и режимами обработки контаминированного микотоксинами корма озон/КО-содержащей газовой смесью являются концентрация озона — 3,5 —
4 мг/л, экспозиция воздействия не менее 40 минут.
3. Результаты исследований указывают на необходимость дальнейших испытаний данного высокоэффективного метода детоксикации кормов с целью оптимизации технологических схем, режимов и параметров детоксикации с учетом масштабного фактора.
Библиографический список
1. О мерах по ускоренному развитию мясного животноводства как приоритетного направления обеспечения продовольственной безопасности России: стенографический отчет о заседании президиума Государственного совета // Сайт Министерства сельского хозяйства России [Электронный ресурс]. — Режим доступа: http: //www mcx. ru (дата обращения: 12. 10. 2012).
2. Иванов, Е. Н. Матросова, Е. Н., Иванов, А. В. Использование микроорганизмов для детоксикации афлатоксина В1 [Электронный ресурс]. — Режим доступа: http: // www. books. google. ru/books?id = o5DZqGrHIxoC (дата обращения: 13. 02. 2013).
3. Кривошипин, И. П. Озон в промышленном птицеводстве / И. П. Кривошипин. — М.: Росагропромиздат, 1988. — 175 с.
4. Обоснование разработки нового метода озоно-вихревой обработки зерновых культур / В. В. Педдер [и др.] // Биомедицинские технологии и приборостроение: сб. научных трудов. — Омск: Копир. Центр, 1999. — Ч. 2. — С. 117−146.
5. Скальный, А. В. Химические элементы в физиологии и экологии человека / А. В. Скальный. — М.: «ОНИКС 21 век»: Мир, 2004. — 216 с.
6. Ванин, А. Ф. Оксид азота в биологии: история, состояние и перспективы исследований / А. Ф. Ванин // Биохимия. — 1998. — Т. 63. — Вып. 7. — С. 867 — 869.
7. Применение озона и озон/КО-содержащих веществ в медицине: Методические рекомендации / В. В. Педдер [и др.] - НПП «Метромед». — Омск: Изд-во ОмГТУ, 2009. — 80 с.
8. Риллинг, С. Практика озоно-кислородной терапии: справ. и рук. / C. Риллинг, Р. Вибан-Гейдельбер. — Штутгарт: Изд-во д-ра Э. Фишера, 1985. — 152 с.
9. Нейтрализация афлатоксина В1 озонированием и адсорбцией наноалмазами / А. П. Пузырь [и др.] // Российские нанотехнологии. — 2010. — Т. 5. № 1 — 2. — С. 122- 125.
10. McKenzie, K. S. Oxidative degradation and detoxification of mycotoxins using a novel source of ozone / McKenzie, K. S., Sarr A. B., Mayura K., Bailey R. H., Miller D. R., Rogers T. D., Norred W. P., Voss K. A., Plattner R. D., Kubena L. F., Phillips T. D. // Department of Veterinary Anatomy and Public Health, Faculty
ОМСКИЙ НАУЧНЫЙ ВЕСТНИК № 1 (118) 2013 ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ ОМСКИЙ НАУЧНЫЙ ВЕСТНИК № 1 (118) 2013
*
of Toxicology, College of Veterinary Medicine, Texas A& amp-M University, College Station 77 843−4458, USA.
11. Симонова, И. А. Случай отравления свиней кормами, контаминированными микотоксинами / И. А. Симонова // Современные проблемы и инновационные подходы к диагностике, лечению и профилактике болезней животных и птиц: материалы Междунар. науч. -практ. конф. «Экологические проблемы использования природных и биологических ресурсов в сельском хозяйстве» (31 мая-1 июня 2012 г.). — Екатеринбург: Урал. аграр. изд-во, 2012. — С. 209.
12. Методические указания по санитарно-микологической оценке и улучшению качества кормов. — М., 1986. — С. 68.
ГЕРУНОВА Людмила Карповна, доктор ветеринарных наук, профессор (Россия), профессор кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства Омского государственного аграрного у ниверситета им. П. А. Столыпина (ОмГАУ).
ПЕДДЕР Валерий Викторович, генеральный директор НПП «Метромед», академик Российской академии медико-технических наук, заслуженный изобретатель РФ, директор НИИ Биомедицинских
технологий и приборосторения Омского государственного технического университата. СИМОНОВА Ирина Александровна, аспирантка кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства Ом-ГАУ, заведующая химико-токсикологическим отделом Омской областной ветеринарной лаборатории. БОЙКО Татьяна Владимировна, кандидат ветеринарных наук, доцент (Россия), доцент кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства ОмГАУ.
НАБОКА Максим Владимирович, консультант НПП «Метромед», ассистент кафедры онкологии с курсом лучевой терапии Омской государственной медицинской академии.
НАДЕЙ Елена Витальевна, консультант НПП «Метромед», консультант Академического центра медицины.
Адрес для переписки: tvboiko@rambler. ru
Статья поступила в редакцию 15. 02. 2013 г.
© Л. К. Герунова, В. В. Педдер, И. А. Симонова,
Т. В. Бойко, М. В. Набока, Е. В. Надей
УДК 619: 618. 1:636.2 о. С. ЕПАНЧИНЦЕВА
Б. В. ГУРИНОВ а. А. КОЛУПАЕВ
Омский государственный аграрный университет им. П. А. Столыпина
Омская областная станция по борьбе с болезнями животных
РАСПРОСТРАНЕНИЕ И СЕЗОННАЯ ДИНАМИКА АКУШЕРСКО-ГИНЕКОЛОГИЧЕСКИХ БОЛЕЗНЕЙ У КОРОВ В ХОЗЯЙСТВАХ ОМСКОЙ ОБЛАСТИ
Проведены исследования по изучению распространения и сезонности проявления акушерско-гинекологических болезней у коров в хозяйствах районов четырех природно-климатических зон Омской области за период с 2002 по 2011 год. Установлено, что акушерско-гинекологическими болезнями, которые распространены преимущественно в зимний стойловый период, в хозяйствах Омской области ежегодно болеют 24−26% коров, а в районах, относящихся к разным природно-климатическим зонам, заболеваемость варьирует от 15 до 35%.
Ключевые слова: коровы, акушерско-гинекологические болезни, распространение, сезонная динамика.
Введение. При анализе причин неудовлетворительного состояния воспроизводства крупного рогатого скота в сельхозпредприятиях с различным уровнем ведения молочного скотоводства у 37 — 66% бесплодных коров обнаруживают ту или иную патологию органов размножения [1].
Одной из основных причин бесплодия коров являются осложнения родов и послеродовые болезни
репродуктивных органов, заболеваемость которыми бывает наибольшей в зимне-весенний период года [2−4].
Во многих регионах выбраковка коров вследствие бесплодия (24−40%), болезней вымени (1525%) или низкой продуктивности (4−16%) на 3−8% превышает ввод нетелей в основное стадо. Традиционная практика массовых отелов с марта по май и

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой