Диагностика и профилактика коронавирусной инфекции собак

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Сельскохозяйственные науки


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

Литература
1. Kahn D.E., Gillespie J.H. Feline viruses: pathogenesis of picornavirus infection in the cat. // Am. J. Vet. Res. 1971. 32. P. 521−531.
2. Dawson S., Bennet D., Carter S.D., et. all. Acute arthritis of cats associated with feline calicivirus infection // Res. of vet. sciense. 1994. 56 (2). P. 133−143.
3. Hoover E.A., Kahn D.E. Lesions produced by feline picornaviruses of different virulence in pathogen-free cats // Vet. Pathol. 1973. 10. P. 307−322.
4. Kadoi K, Kadoi B.K. Stability of feline caliciviruses in marine water maintained at different temperatures // New Microbiol. 2001. 24 (1). P. 17−21.
5. Knowles J.O., McArdle F, Dawson S., et all. Studies on the role feline calicivirus in chronic stomatitis in
cats // Vet. Micr. 1991. 27 (3−4). P. 205−219.
6. Leonard C.A., Tillson M. Feline lameness // Vet. Clin. North America, Small Animal Pract. 2001. 31. 1. P. 143−163.
7. Love D.N. Pathogenicity of a strain of feline calicivi-
rus for domestic kittens // Austr. Vet. j. 1975. 51 (12). P. 541−546.
8. Pedersen N.C., Ekman S., Laliberte L. A transient febrile & quot-limping"- syndrome of kittens caused by two different strains of feline calicivirus // Feline pract. 1983. 13. P. 26.
9. Wardley R.C., Povey R.C. The clinical disease and patterns of excretion associated with three different strains of feline calicivirus // Res. Vet. Sci. 1977. 23. P. 7−14.
УДК 619: 578. 834. 1:636. 8
А. А. Ольшанская (ФГУ ВГНКИ, Москва)
ДИАГНОСТИКА И ПРОФИЛАКТИКА КОРОНАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ СОБАК
В общей патологии заболеваний собак энтеротропные инфекции щенков продолжают занимать ведущее место. По данным официальных ветеринарных отчетов из года в год в городе Москва снижается количество и степень проявления чумы плотоядных и инфекционного гепатита, но возрастают болезни, протекающие с явлениями поражения кишечного тракта — свыше 54% от общего количества зарегистрированных случаев заболеваний.
Коронавирусный энтерит собак — высококонтагиозное заболевание. быстро распространяющееся среди восприимчивого поголовья. К инфекции восприимчивы собаки всех возрастов, но наиболее чувствительны животные в возрасте 1−6 месяцев. Это заболевание необходимо дифференцировать от чумы, парвовирусного энтерита, сальмонеллеза и диарей алиментарного происхождения (1, 2, 4, 6, 7)
Возбудитель был впервые выделен в США в 1971 году от служебной немецкой овчарки. Вирус, обозначенный как «А-71», вызывал цитопатические изменения в первичных и перевиваемых культурах клеток собак. Важность коронавирусной инфекции у собак становится очень актуальной в начале 1978 года, когда повсеместно в США наблюдались вспышки коронавирус-ной диареи. Особенно тяжело заболевание протекало у породистых собак. В последующие годы это заболевание собак регистрируется во многих странах мира.
Собаки могут быть заражены двумя коронавирусами: собачьим коронавирусом
и вирусом трансмиссивного гастроэтерита свиней. Оба вируса вызывают желудочно-кишечные инфекции у собак (1, 2).
Болезнь характеризуется изнурительной диареей, дегидратацией, общей интоксикацией, приводящей к гибели животных. При вскрытии отмечают обезвоживание организма, воспалительные изменения тонкого отдела кишечника: слизистая оболочка утолщена, гиперемирована, с точечными кровоизлияниями и участками некроза. Наблюдают расширение кишечных петель, наполненных жидкостью и увеличение брыжеечных лимфатических узлов. Микроскопические изменения характеризуются атрофией и слиянием ворсинок, углублением крипт, уплощением эпителиальных клеток и выделением бокаловидных клеток (1, 8, 9).
Эпителий тонкого отдела кишечника -основная мишень коронавируса собак. Нарушение всасывания и недостаток пищеварительных ферментов являются результатами диареи, которую можно наблюдать через 18−72 часа после заражения собаки [1].
Источником вируса в естественных условиях являются больные и переболевшие животные. Вирус выделяется с калом больных животных в течение 15−16 дней, наиболее интенсивно — на 5−7-й день болезни. Заражение, как правило, происходит интр-назальным или алиментарным путем.
Как и при других вирусных инфекциях, бактериальные и паразитические популяции отдельного животного могут зна-
чительно изменить течение заболевания и подавить восстановление нарушенного эпителия [3, 4, 5, 10].
В 1992 году сотрудники ФГУ «ВГНКИ» впервые в отечественной практике выделили коронавирус собак от щенка немецкой овчарки. Изучение вируса под электронным микроскопом позволило установить, что вирионы имеют сферическую форму с диаметром 90−120 нм. Поверхность частиц покрыта выступами, образующими подобие солнечной короны. Нук-леокапсиды представлены спиральными шипами диаметром 1−13 нм. Вирус хорошо проходит через мембранные фильтры с размерами пор 450 нм и 220 нм. Вирус был адаптирован к чувствительным культурам клеток и в течение 10 пассажей стабильно сохранял свои свойства.
Приоритет разработки подтвержден патентом Российской Федерации.
Коронавирус стабилен при рН 6,0−6,5, он не инактивируется при рН 3,0, чувствителен к хлороформу.
Выделенный вирус размножается в чувствительных к данному вирусу первичных и перевиваемых культурах клеток с выраженным цитопатическим действием (ЦПД) на 3−7 сутки. Обобщенные результаты исследований представлены в таблице 1.
Полученные нами данные свидетельствуют, что используемые клеточные культуры имели различную чувствительность к этому вирусу. Изучаемый нами штамм вируса на протяжении 5 пассажей не размножался в культуре клеток почек эмбриона свиньи, семенников быка, фиброблас-тов японских перепелов и фибробластов куриных эмбрионов. Инфекционная активность вируса в чувствительных клеточных культурах составляла от 105,5 до 106,5
ТЦД50/мл.
Трипсин может повышать инфекци-онность коронавируса в культуре клеток. Мы предполагаем, что обработка клеток трипсином (10 мкг/мл) освобождает кле-
точные рецепторы, а обработка вируса вероятно изменяет вирусные белки и делает их более активными в отношении клеточных рецепторов. У белых мышей и морских свинок при экспериментальном заражении болезнь не развивалась.
Выделенный штамм вируса не обладал гемагглютинирущими свойствами.
Штамм коронавируса собак «Карат» был депонирован во Всероссийскую государственную коллекцию штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве.
Для дифференциации заболевания вызываемого коронавирусом, от других энте-ротропных инфекций сотрудниками ФГУ «ВГНКИ» разработан метод диагностики коронавирусной инфекции с помощью флуоресцирующих антител.
Приготовление люминесцентного диа-гностикума к коронавирусу собак проводили в Научно-исследовательском институте эпидемиологии и микробиологии им. Н. Ф. Гамалеи АМН РСФСР.
Использовали гипериммунную кроличью сыворотку к коронавирусу собак, обладающую специфической активностью в реакции нейтрализации с титром 1: 64. Полученный после переосаждения осадок глобулинов, растворяли в изотоническом растворе хлористого натрия, освобождали от сернокислого аммония путем диализа против Л, 15 М раствора хлорида натрия с 0,01 М фосфатным буфером рН 7,4.
После диализа глобулина коньюгиро-вали с изотиоцинатом флуоресцена. Полученная сыворотка имела следующие показатели: белок 15 мг/мл, метка 3 мг/ мл.
Для люминесцентного метода исследования использовали: негустые мазки, тонкие мазки-отпечатки, гистосрезы толщиной 4−8 мкм, сделанные из разных участков пораженного кишечника, стекла с монослоем зараженных коронавирусом тканевых культур.
Коронавирус собак выделяли из ректальных тампонных проб через 1 или 2 дня
Чувствительность клеточных культур к выделенному штамму вируса
Таблица 1
Культура клеток
Сроки появления ЦПД., сут.
Степень выраженности ЦПД
Титр инфекционной активности
CRFK А-72 МДСК ПЩ (первичная культура) ПЩ (суб. культура) ПЭС ККЭ КПЭ СБ
+++ +++ +++ +++
6,5 ТЦД50, 3
6,0 тЦД5°/™3 6,5 тЦД50з 5,75ТЩС3
после появления клинических симптомов болезни. Выделение вируса продолжается 6−9 дней. Обычно вирус находили в пробах тонкого и толстого отделов кишечника методом флуоресцирующих антител на 2−10 день после начала заболевания. Методом флуоресцирующих антител нами установлено, что вирусный антиген может быть обнаружен в цитоплазме эпителиальных клеток тонкого отдела кишечника. При оценке результатов иммуннофлу-оресцентных исследований, диагноз считается установленным, при обнаружении 2-х и более клеток цилиндрического эпителия в поле зрения с яркостью свечения, оцениваемой по условной шкале на 2−4 креста.
Изучая размножение вируса в культурах клеток с помощью флуоресцирующих антител было установлено, что вирус локализуется главным образом в цитоплазме эпителиальных клеток ворсинок тонкого отдела кишечника. Специфическая флюоресценция диффузно распространяется по всей цитоплазме зараженной клетки, но отсутствует в ядре, что характерно для РНК-содержащих вирусов, к которым относится коронавирус собак.
Для профилактики коронавирусного энтерита следует проводить раннюю вакцинацию щенков собак начиная с 6 недельного возраста, а в неблагополучных питомниках с 4−6 недель жизни. С этой целью нами разработана и успешно испытана инактивированная вакцина против ко-ронавирусного энтерита собак.
Проведенные эксперименты показали образование антител против коронавирус-ного энтерита на 5−7 сутки после вакцинации, а на 21 сутки в серологических реакциях мы наблюдали 4-х кратный прирост антител.
Безвредность вакцины против коро-навирусного энтерита собак проверяли на лабораторных животных (морских свинках массой 250−300 г и на мышах массой 14−16 г) и естественно восприимчивых животных. За период наблюдения воспалительной реакции на месте введения препарата и случаев заболевания животных не отмечено. Вакцина безвредна для щенков собак и создает стойкий иммунитет у вакцинированных животных.
Изучение оптимальных сроков применения вакцины против коронавирусного энтерита собак проводили на 3-х группах щенков в возрасте 1,5, 3 и 4 месяцев. Животных вакцинировали внутримышечно двукратно с интервалом 14 суток, в дозе 1 см³. Динамика образования антител к ко-
ронавирусу собак после вакцинации показана в таблице 2.
Полученные нами результаты показывают, что предложенная вакцина создает высокую антигенную активность у щенков не только 3-х и 4-х месячного возраста, но и у щенков 1,5 месячного возраста, особенно подверженных заболеванию коронави-русным энтеритом.
Оценку иммунологической эффективности вакцины против коронавирусного энтерита собак проводили на 12 подопытных и 4 контрольных щенках собак 3-х месячного возраста из группы серонегатив-ных животных.
Подопытных животных (по 4 головы в группе) предварительно прививали вакциной против коронавирусного энтерита собак внутримышечно в дозе 1 см³. На 21 сутки от начала эксперимента всех животных заражали контрольным штаммом «Карат» в дозе 106,0 ТЦД50/см3. На 3 сутки после заражения у щенков контрольной группы наблюдали угнетенное состояние, учащенную дефекацию, фекалии жидкой консистенции. На 7 сутки 3 щенка контрольной группы пали с признаками тяжелой формы диареи. На вскрытии у павших животных отмечено обезвоживание, увеличение лимфоузлов кишечника. Слизистая оболочка кишечника утолщена, гиперемирована, с точечными кровоизлияниями и участками некроза. Вакцинированные щенки оставались живы и клинически здоровы в течение периода наблюдения.
Вакцинация у подопытных щенков не вызывала поствакцинальных осложнений и создавала стойкий иммунитет при контрольном заражении.
Вакцина может быть использована для иммунизации, как щенков, так и взрослых собак. Нами отмечено, что щенки породистых собак болеют коронавирусным энтеритом в более тяжелой форме чем беспородные животные. Для получения у щенков высоких гуморальных антител к ко-ронавирусу вакцинацию собак необходимо проводить не позднее, чем за 1 месяц до вязки.
При проведении работы были большие трудности в приобретении для опытов серонегативных по коронавирусу щенков, что свидетельствует о высоком уровне циркуляции вируса среди собак.
Нами также проведена работа по получению иммуноглобулинов для лечения и профилактики коронавирусного энтерита собак, поиску продуцентов лечебной сыворотки и испытания активности полученно-
Динамика накопления поствакцинальных антител у щенков собак
Таблица 2
Возраст собак, мес.
№ собаки
До вакцинации (РНГА)
Перед ревакцинацией (РНГА)
После вакцинации, сут. (РНГА)
45 (сут.)
60 (сут.)
1,5 1,5 1,5 1,5
1: 2 1: 4 1: 4 1: 2
16 16 16 64
1: 64 1: 64 1: 64 1: 64
1: 64 1: 64 1: 128 1: 64
1: 8 1: 16 1: 16 1: 8
64 64 64 64
1: 128 1: 64 1: 64 1: 128
1: 64 1: 64 1: 128 1: 128
9
10 11 12
128 512 256 256
1: 1024 1: 2048 1: 1024 1: 2048
1024 2048 1024 1024
го препарата на щенках собак.
В поисках оптимальных продуцентов лечебной сыворотки к коронавирусу собак, были испытаны кролики, овцы, козы и свиньи. Иммунизацию продуцентов проводили смесью вируса с неполным масляным адъювантом (1: 1), а последующие иммунизации путем введения очищенной культу-ральной вируссодержащей жидкости. При этом активность коронавируса (штамм «Карат») составляла 6,5 ^ ТЦД50/см доза вируса — 2 см³, интервал между введениями составлял 21 день.
Сыворотку крови получали общепринятыми методами спустя 2 недели после последнего введения антигена. Кровь отбирали в объеме 150−200 см3 от одного животного-донора. Для определения титра вируснейтрализующих антител к корона-вирусу собак в сыворотке крови использовали реакцию непрямой гемагглютинации (РНГА), в культуре клеток CRFK.
Данные по накоплению титров антител у различных видов животных- доноров приведены в таблице 3.
Дальнейшую работу по получению гипериммунной сыворотки от животных мы проводили на овцах, т.к. от этих животных можно получить достаточно большой объем сыворотки крови с высокими и стабильными титрами к коронавирусу собак (таблица 3).
Дальнейшая работа позволила создать Накопление антител к кор
глобулин для лечения коронавирусной инфекции собак. Для выделения общих гло-булиновых фракций из сыворотки крови к коронавирусу собак были использованы общепринятые методы с использованием солей аммония и ПЭГ. Эти два способа позволяли получить глобулин к коронавирусу собак с титром 1: 1024−1:4096 в РНГА.
Пассивный иммунитет у животных, обработанных с профилактической целью, сохраняется до 10 дней. По истечении этого срока, у здоровых животных, для создания активного иммунитета проводят вакцинацию.
Проверку активности полученного глобулина к коронавирусу собак проводили на щенках собак. В опыте были использованы 3-х месячные щенки собаки породы немецкая овчарка питомника «Красная звезда». Глобулин вводили внутримышечно в объеме 1 см³. Сыворотку крови исследовали в РНГА на 1, 2 и 7 сутки.
Данные этого опыта приведены в таблице 4.
Результаты проведенных опытов свидетельствуют об усилении защитных функций организма животных к коронавирусу собак после введения глобулина. Наибольший титр антител 1: 512−1:2048 у щенков собак, наблюдается на вторые сутки, а на 7 сутки, после введения глобулина, он снижался вдвое.
Для изучения лечебных свойств полуТаблица 3
авирусу собак у животных
Вид животных Кол-во животных Доза вируса (активность Ш& gt-5 ТЦДЯЛ, л) Способ иммунизации Титр антител в сыворотке крови (РНГА)
Кролики 16 0,5 см³ 3-х кратно 1: 64−1:128
Овцы 3 1 см³ -«- 1: 1024−1:8192
Козы 3 1 см³ -«- 1: 1024−1:2048
Свиньи 2 1 см³ -«- 1: 512−1:2048
ченного глобулина было проведено экспериментальное заражение 5 беспородных щенков собак в возрасте 2−3 месяцев путем внутрибрюшинного введения 3 см³ вируссо-держащей жидкости с титром 106,0 ТЦД50/мл. На третьи сутки после введения вируса у 4-х щенков отмечалось угнетенное состояние, учащенная дефекация, фекалии жидкой консистенции. Трем щенкам, с момента проявления клинических признаков, дважды вводился глобулин к коронавирусу собак, внутримышечно в объеме 2 см³.
На 5 сутки после начала заболевания один щенок пал с признаками тяжелой формы диареи. Три щенка, получившие глобулин, остались живы и клинически здоровы в течение периода наблюдения. У одного щенка контрольной группы вызвать заболевание нам не удалось.
Для профилактики заболевания животным массой до 5 кг вводят 1,0 см³, свыше 5 кг — 2,0 см³ препарата. С лечебной целью глобулин вводят в указанных дозах 1−3 раза с интервалом 12−24 часов, в зависимости от тяжести патологического процесса. Препарат вводят подкожно или внутримышечно.
Препарат можно применять в комплексе с симптоматическим лечением, введением витаминных препаратов, антибиотиков, пробиотиков.
Полученные нами флуоресцирующие антитела к коронавирусу собак позволили диагностировать это заболевание при исследовании кала или мазков-отпечатков кишечника больных животных.
Для проведения диагностических исследований нами проведена работа по со-
Активность глобулина к коро
зданию набора для постановки реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Эта реакция позволяет в течение 2-х часов определить уровень антител к коронавирусу собак в сыворотке крови животных. Проведение диагностических исследований показало близкое серологическое родство между коронавирусом собак и вирусом кошачьего инфекционного перитонита и трансмисивного гастроэнтерита свиней. Перекрестные серологичесие реакции установлены также с коронавирусом телят и бронхитом кур.
Результаты проведенных испытаний свидетельствуют о том, что заведомо положительные сыворотки к коронавирус-ному энтериту собак были активны в реакции РНГА с титром 1: 4096.
Отрицательные результаты получены при исследовании проб сыворотки крови клинически здоровых животных, не содержащих таких антител. Активность эритро-цитарного диагностикума с сыворотками крови подозрительных к заболеванию животных составила 1: 64−1:1024.
Достоверно значимый положительный результат получен при конечном разведении исследуемой сыворотки 1: 4096.
В результате проведения комплекса исследований у щенков собак установлено заболевание с клиническими признаками диареи, вызываемое коронавирусом. Источником инфекции являются больные и переболевшие собаки. Выделен, изучен и адаптирован к культурам клеток штамм коронавируса собак. Разработаны методы диагностики и специфического лечения коронавирусного энтерита собак.
Таблица 4
вирусу собак на щенках собак
№ п/п Титр антител к коронавирусу собак в РНГА
до введения 1 сутки 2 сутки 7 сутки
1 1:8 1: 64 1: 512 1: 128
2 1: 128 1: 512 1: 1024 1: 1024
3 1: 512 1: 1024 1: 2048 1: 1024
4 1: 64 1: 512 1: 512 1: 128
5 1:8 1: 128 1: 512 1: 512
6 1: 512 1: 2048 1: 2048 1: 1024
РЕЗЮМЕ
Коронавирусный энтерит собак — высококонтагиозное заболевание. быстро распространяющееся среди восприимчивого поголовья. Методом флуоресцирующих антител установлено, что вирусный антиген обнаружен в цитоплазме эпителиальных клеток тонкого отдела кишечника. Проведена работа с целью получения иммуноглобулинов для лечения и профилактики коронавирусного энтерита собак, поиску продуцентов лечебной сыворотки и испытания активности полученного препарата на щенках собак. Разработана и успешно испытана инактивированная вакцина против коронави-русного энтерита собак.
1. Appel M, Cooper B., Greisen H. Et. Carmichail. Status reporcanine viral enteritis // Am. J. Vfet. Res. 1978. 173. P. 1516−1518.
2. Binn, L.N., Lazar, E.C., Keenan, K.P., Huxsall, D.L., Marchucki, R.H., and Strano, A.J. Recivery and characterization of a coronavirus from military dogs with diarrhea // Proc. 78th Meeting U.S. Animal Health Association, 1974. P. 359−366.
3. Eugster A.K. et Sneed L. Viral intestinal infections of animals and man // Comp. Immunol. Microbiol Infect. Dis. 1980. 2. P. 417−435.
4. Evermann, J. F, Foreyt, WJ., Maag-Miller, L., Leathers, C. W, Mc Keirnan A.L. and Lea Master. Acute he hemorrhage enteritis associated with canine coronavirus and parvovirus infection in a captive coyote population // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1980. 177. P. 784−786.
5. Kojima A., Fujinami F, Doi K., Yasoshima A. and Okaniwa A. Isolation and properties of sialodacryo-adenitis virus of rat // Exp. Anim. (Tokyo). 1980. 29. P. 409−418.
6. Mainka S.A., Qiu X., He T., Appel M.J. Serologic survey of giant pandas (Ailuropoda melanolueca), and domestic dogs and cats in the Wolong Reserv, China // J. Wildl. Dis. 1994, 30. P. 86−90.
7. Martin-Calvo M., Marcotegui M.A., Simarro I. Canine coronavirus (CCV) characterization in Spain. Epidemiological aspects // Zentrabl Veterinarmed,
1994, 41. P 249−256.
8. Osterhaus A.D., Dost G.A., Wiirahaadiredia R.M. and Van den Ingh A.M. Canine viral enteritis: Prevalence of parvo-, corona-, and rotavirus infection in dogs in the Netherlands // Vet. Quart. 1980, 2. P. 181−190.
9. Spaan W Cavanagh D., Hozznek M. Coronaviruses: structure and genome expression //J. General-Vi-roloogy, 1988, 69. P. 2939−2952.
10. Tennant, B.J., Gaskell, R.M., Gaskell, C.J.: Studies of the survival of canine coronavirus under defferen environmental conditions // Vet. Microbiol, 1994, 42. P. 255−259.
12. Ольшанская А. А., Уласов В. И., Могильный Ю. И., Захарова Е. Д. Изучение коронавируса собак. Ветеринария, № 6, 1995. С. 57−59.
13. Патент № 210 433 «Штамм Coronavirus canine, используемый для контроля иммуногенной активности вакцин и получения сывороток для лечения и диагностики коронавирусной инфекции собак». Авторы: А. А. Ольшанская, В. И. Уласов, Е. Д. Захарова. Зарегистрирован в Государственном реестре изобретений 27 декабря 1977 г.
14. Патент № 2 211 705 «Вакцина против коронави-русного энтерита собак». Авторы: А. А. Ольшанская, В. Н. Сазонкин, В. И. Уласов. Зарегестриро-ван в Государственном реестре изобретений 10 сентября 2003 г.
М. И. Кошелева, И.А. Молчанов
(Российский университет дружбы народов, кафедра ветеринарной патологии, г. Москва)
БАБЕЗИОЗ СОБАК: ЭПИЗООТОЛОГИЯ, МОРФОМЕТРИЯ ПАРАЗИТА, ФАГОЦИТАРНАЯ АКТИВНОСТЬ НЕЙТРОФИЛОВ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ТЯЖЕСТИ ТЕЧЕНИЯ ИНВАЗИИ
За последние 10 лет наблюдается тенденция к росту заболеваемости собак ба-безиозом. (Колосов А.А., Серов А. Н., 1997) К этому привело расширение границ обитания и рост численности популяции ик-содовых клещей — переносчиков Babesiа canis. Заметно возросло количество собак в городах, увеличилась их миграция в летний (дачный) период между сельской местностью и городом. Возросла возможность контакта клещей-переносчиков и их хозяев-собак, которые непосредственно разносят клещей, способствуя их расселению, что ведет к возникновению новых очагов в местах, где они ранее отсутствовали. Это подтверждается как и многочисленными публикациями на эту тему, так и собственными исследованиями.
Бабезиоз представляет значительную проблему владельцам собак, так как несвоевременное обращение в ветеринарную клинику приводит к снижению эффективности лечения, удлинению реабилитацион-
ного периода, а при острой форме бабези-оза — даже к летальному исходу. Большое количество информации об опасности заражения собак бабезиозом в весенне-летний и осенний период года в средствах массовой информации, активная пропаганда профилактики бабезиоза в ветеринарных клиниках в последние годы привела к более внимательному отношению владельцев собак к своим питомцам, но следует отметить, что использование акарицид-ных препаратов с целью профилактики не дает полной гарантии от заражения собак бабезиозом. В ряде случаев заражение собак бабезиозом происходит и после обработок высокоэффективными акарицидны-ми препаратами, что может свидетельствовать как о привыкании клещей к данным акарицидам, так и о повышении плотности переносчиков Babesiа canis.
Целью нашего исследования было изучить эпизоотологию бабезиоза собак в Московской области на примере Нарофо-

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой