Особенности инфекционного процесса при инфицировании лабораторных животных нетуберкулезными микобактериями

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Сельскохозяйственные науки


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

ные и селекционированные нами изоля-ты фагов вышеперечисленных энтеробактерий из коллекции УГСХА в различных комбинациях, в зависимости от этиологии заболевания и чувствительности к ним идентифицированных возбудителей болезни, циркулирующих на конкретной ферме.
С целью повышения эффективности научно-исследовательской работы в Ульяновской государственной сельскохозяйс-
твенной академии в 2006 году, используя материально-техническую, научно-методическую базу и кадровый потенциал кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы создан Научно-исследовательский центр микробиологии и биотехнологии, одним из структурных подразделений которого является лаборатория экспериментальной микробиологии и бактериофагии.
РЕЗЮМЕ
Таким образом, бактериофаги продолжают оставаться одним из интересных биологических объектов, а бактериофагия — перспективным направлением, как для фундаментальных, так и прикладных научных исследований.
Литература
1. Васильев Д. А., Золотухин С. Н., Жигалева О. Н., Русалиев В. С., Каврук Л. С. Разработки УлГСХА в области фагодиагностики, фаготерапии и фагопрофилактики // Материалы Международного семинара «Перспективы использования препаратов бактериофага для превенции и лечения инфекций, вызванных патогенными и условно-патогенными микроорганизмами». Тбилиси, 2005. С. 14.
2. Д’Эрелль. Бактериофаг и феномен выздоровления. Тбилиси: Изд. Тбилисского государственного университета. 1935. С. 139.
3. Золотухин С. Н. Антибиотикорезистентность полевых штаммов морганелл, выделенных от погибших и больных диареей поросят // Материалы 7-ой межгосударственной конференции «Новые фармакологические средства в ветеринарии». Санкт-Петрбург, 1995. С. 78−79.
4. Золотухин С. Н., Каврук Л. С., Васильев Д. А. Сме-
шанная кишечная инфекция телят и поросят, вызываемая патогенными энтеробактериями // Уч. пособие. Ульяновск, 2005.
5. Парайко Е. Т. Антибиотикочувствительность изо-лятов протея, выделенных от поросят при желудочно-кишечных заболеваниях // Проблемы научного обеспечения животноводство Молдавии. Тез. докл. Кишинев, 1990. С. 99-l0o.
6. Тугаринов О. А., М. К. Пирожков, Ю. А. Малахов. Сборник научных трудов. М.: ВГНКИ. 2001. Т. 62. С. 68−75.
7 Barben M., Water-Worth P.N. Antibiotic sentivitg of Proteus species // J. Chin. Pathol. 1964. Vol. 27. P. 69−74.
8. Trollidenier H. Die Resistenzenzentwiklunng patho-genen Kieme aus veterinarmedizinschen Untersu-chungs material in den Jari 1971 bis 1977 // Veterin-armedizin, 12, 1980. P. 460−467.
Н.Г. Толстенко
(ВИЭВ)
ОСОБЕННОСТИ ИНФЕКЦИОННОГО ПРОЦЕССА ПРИ ИНФИЦИРОВАНИИ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ НЕТУБЕРКУЛЕЗНЫМИ МИКОБАКТЕРИЯМИ
В последнее время в отечественной и зарубежной литературе все чаще обсуждается вопрос о микобактериозах, заболеваниях вызываемых нетуберкулезным микобактериями.
В медицинской практике они являются в ряде случаев причиной легочных заболеваний, шейных лимфаденитов, поражений кожи, мочеполового тракта и т. д. (Т.Ф. От-тен, А. В. Васильев, 2005, Wolinsky Е., 1981).
В животноводстве интерес к нетуберкулезным микобактериям объяснялся в основном тем, что они обладают аллергизи-рующей способностью и вызывают перекрестные реакции на введение туберкулина, что вызывает затруднения при поста-
новке диагноза на туберкулез.
Однако ряд авторов указывают на способность нетуберкулезных микобактерий проявлять патогенность при определенных условиях (Меин А., Шлиссер Т., 1962- Насаль Ю., 1963- Нелюбин В. П., 1968- Козлов Н. Н., 1977, и др.). Шлиссер считает, например, что микобактерии-сапрофиты способны вызывать у людей и животных туберкулезоподобные изменения.
Согласно данным Мегопе е! а1. (2001) в странах Центральной Африки широко распространена кожная инфекция, вызванная М. и1сегаш, характеризующаяся образованием болезненных эритоматозных узелков с последующим развитием некроза и язв.
Широкое распространение микобактерий комплекса avium-intracellulare во внешней среде (корма, вода, подстилка, почва и др.) приводит к частым случаям заражения ими свиней. При патоморфологическом исследовании изменения в лимфатических узлах брыжейки и головы имеют однотипное строение при заражении микобактериями туберкулеза и комплекса avi-um-intracellulare (Кассич Ю.Я. и др., 1990).
Отдельные исследователи выделяли из лимфатических узлов свиней нетуберкулезные микобактерии I, II и III группы по Раньону. Эти микобактерии вызывали туберкулезоподобные изменения (Seeger F, 1968- Szabo J., Tuboby S., Szeky A., 1974 и др.).
L. Joubert et al. (1963) сообщали о вызванной M. aquae узелковые воспаления кожи сосков вымени у коров. Известны случаи маститов у коров, вызванных M. fortui-tum (Peterson, 1965) и M. smegmatis (Stuart, Harvey, 1951).
При инфицировании крупного рогатого скота нетуберкулезными микобактериями отмечают кратковременность аллергического состояния, в основном в течение 3−8 месяцев. При повторных исследованиях стада у многих животных внутри-кожные реакции выпадают и появляются у других. О. В. Мартма (1982) считает, что у отдельных животных возможно обнаружение в лимфатических узлах туберкулезоподобных изменений.
Способность микроорганизмов вызывать инфекционный процесс называется патогенностью. Это генетический признак и каждый штамм обладает своей, только ему присущей степенью патогенности.
Особенности инфекционного процесса у крупного рогатого скота, вызванного нетуберкулезными микобактериями, характеризуется в преобладании скрытой, латентной инфекции, которая выражается лишь в сенсибилизации животных к туберкулину.
В литературе имеются незначительные данные о выделении нетуберкулезных микобактерий от собак и кошек. Из материала от 210 собак I. Seeger (1969) выделил в 16 случаях нетуберкулезные микобактерии. На основе анализа экспериментальных данных он пришел к выводу, что скотохромогенные микобактерии чаще всего непатогенны для животных. Однако при определенных предрасполагающих факторах, например, при силикозе, указанные нетуберкулезные микобактерии могут проявлять патогенность и вызвать ту-
беркулезоподобные изменения в организме животных.
Для выявления потенциальной патогенности нетуберкулезных микобактерий использовали различные виды лабораторных животных и способы заражения. Так для определения вирулентности проводилось внутричерепное заражение морских свинок (Гращенкова О.В., Зыков М. П., 1985). Н. М. Макаревич (1973) в своих исследованиях использовала наряду с общепринятой методикой подкожного заражения -интратестикулярное и внутрикожное. Изменяли реактивность организма животных путем введения гидрокортизона. Так, для подавления иммунитета у мышей им одновременно вводили двуокись кремния, циклофосфамид и кортизон. После заражения мышей Млп1хасе11и1аге острый инфекционный процесс развился только у иммунодефицитных животных (Оттен Т.Ф., Васильев А. В., 2005).
Материалы и методы Особенности инфекционного процесса у лабораторных животных изучали на 180 морских свинках и 160 белых мышах, которых содержали 90 дней Из морских свинок сформировали 9 групп по 20 животных, а из белых мышей-8 групп также по 20 мышей.
Для заражения использовали культуры нетуберкулезных микобактерий:
Морских свинок заразили в дозе по 1 мг/мл подкожно, внутрибрюшинно интра-тестикулярно (та же доза в объеме 0,2 мл). На белых мышах изучали высеваемость культур в зависимости от метода заражения разными штаммами микобактерий. Морских свинок разбили по группам:
1 группа подкожный метод заражения
— М. kansasii
2 группа — интратестикулярный — М. kansasii
3 группа — внутрибрюшинный — М. kansasii
4 группа — подкожный — М.
5 группа — интратестикулярный — М.
6 группа — внутрибрюшинный — М.
7 группа — подкожный — М. xenopi
8 группа — интратестикулярный — М. xenopi
9 группа — внутрибрюшинный — М. xenopi
Белых мышей так же разбили на группы:
1 группа подкожный метод заражения
— М. bovis
2 группа — внутрибрюшинный — М. bovis
3 группа — подкожный — M. bridge
4 группа — внутрибрюшинный — M.
bridge
5 группа — подкожный — M. avium
6 группа — внутрибрюшинный — M.
avium
7 группа — подкожный — M. fortuitum
8 группа — внутрибрюшинный — M.
fortuitum
В результате опыта исследовали 180 проб материала от зараженных лабораторных животных нетуберкулезными микобактериями (М. kansasii, M. Xenopi, M. fortuitum).
По 5 морских свинок и по 5 белых мышей убивали через 10,20,30 и б0 дней. Пос-леубойный материал обрабатывали по методу А. П. Аликаевой. Посев материала проводили на яичные среды Левенштейна-Йенсена и Финн-2.
Результаты исследований
При подкожном заражении M. kansasii у морских свинок развивался абсцесс на месте введения, возникают точечные узелки в печени. Эти изменения исчезают к концу опыта (90 дней).
Культуру выделяли только через 10 дней после заражения и высеваемость составила 18%.
Интратестикулярное заражение этой культурой вызывает гнойный орхит, сохраняющийся до окончания опыта, и появление узелков в печени, которые исчезают к б0-му дню опыта. Высеваемость культуры из органов и семенников составила 100% через 10 дней и постепенно снижалась. К концу 2-го месяца культуру не выделяли из органов, а из семенников высевали в 28%. При внутрибрюшинном заражении развивалась жемчужница на сальнике в области поджелудочной железы, узелки на печени. Через б0 дней не наблюдали видимых изменений во внутренних органах. Высева-емость культуры через 10 дней составила 80%, а к концу опыта снизилась до 4%.
Подкожное заражение M. fortuitum у морских свинок вызывает абсцесс на месте введения, точечные узелки в печени наблюдали только на 10-ый день после заражения. В дальнейшем видимых изменений во внутренних органах не наблюдали. Культуру микобактерий не выделяли.
При интратестикулярном заражении наблюдали воспалительный процесс в семеннике с последующей его атрофией, в отдельных случаях- узелки в печени на 10й день после заражения. Культуру микобактерий не выделяли ни из органов, ни из семенников.
При внутрибрюшинном заражении характерно образование узелков на сальнике в области поджелудочной железы, спле-нит, узелки на печени только через 10 дней после заражения, но к 20-му дню эти признаки исчезали. Культуру микобактерий выделить не удалось.
Подкожное заражение M. xenopi у морских свинок обусловливает развитие абсцесса, который исчезает к 30-му дню опыта. Культуру микобактерий выделяли в 100% случев через 10 дней после заражения, в конце опыта — в 4%.
Интратестикулярное заражение этой культурой у морских свинок вызывало воспаление семенника, узелки в печени в первые 20 дней. Культура высевалась из внутренних органов и семенников почти одинаково, первые 20 дней — в 100% и к концу опыта — до 4% случаев.
При внутрибрюшинном заражении у морских свинок характерно образование узелков в печени, жемчужница на сальнике в области поджелудочной железы, к концу опыта эти признаки исчезают. Вы-севаемость культуры была в первые 20 дней после заражения в 100% и снижалась к концу опыта до 5%.
При заражении белых мышей M. bovis подкожно и внутрибрюшинно высевае-мость культуры составила 100% и сохранилась до конца опыта, патологоанатомические изменения (увеличение печени, образование узелков) наблюдаются в течении всего опыта. Наиболее характерно при внутрибрюшинном методе заражения
— увеличение селезенки, пневмония, в отдельных случаях узелки на серозе в области желудка.
При заражении M. bridge подкожно — во внутренних органах видимых изменений не обнаружено, на 30-б0 дни отмечается очаговый некроз хвоста. Выделить культуру не удалось.
При внутрибрюшинном методе заражения отмечено образование точечных узелков во внутренних органах на 10 день после заражения, на 20-й — увеличение селезенки (примерно в 1,5 раза), на 30-й, что характерно — очаговый некроз хвоста, на 60-й — во внутренних органах видимых изменений не наблюдалось.
Высеваемость культуры отмечалась только на 10-й день после заражения, в остальных случаях — отсуствовала.
При заражении M. fortuitum подкожно патологоанатомических изменений не наблюдалось. Культуру выделяли на 20 и 30е дни после заражения. Высеваемость со-
ставляла 60 и 40% соответственно.
При внутрибрюшинном методе заражения через 10 дней отмечались в одном случае незначительное узелки в печени и на 30-й день незначительное увеличение селезенки. Культуру выделить не удалось.
При заражении М^іиш подкожно изменений во внутренних органах не отмечались, культуру выделили только к концу опыта (на 60-й день) и высеваемость составила 40%.
Внутрибрюшинное заражение вызывало незначительное увеличение печени через 10 дней после заражения, увеличение селезенки, к концу опыта на сальнике в области поджелудочной железы — образование узелков. Высеваемость составляла 100% на протяжении всего опыта.
Выводы
1. Установлено, что при внутрибрю-шинном заражении культурами атипичных микобактерий — М. кашаБіі, М. хепорі и МіогШіїиш закономерно выявляется жемчужница на сальнике в области поджелудочной железы.
2. Культуры М. кашаБІі и М. хепорі закономерно выделяются (100%) в первые
20 после заражения морских свинок. Культура M. Fortuitum не выделяются на протяжении всего периода опыта (60 дней).
3. Подкожное заражение белых мышей культурой M. bovis вызывают патологоанатомические изменения через 30 дней, а внутрибрюшинное — через 10 дней и характеризуется более тяжелым течением инфекционного процесса: увеличением селезенки, узелки в печени и легких.
4. Установлено, что подкожное и внут-рибрюшинное заражение M. bridge закономерно вызывает у белых мышей очаговый, а иногда и диффузный некроз хвоста, что может являться дифферинцирующим признаком при идентификации микобактерий.
5. Культура M. avium вызывала у белых мышей патологоанатомические изменения только при внутрибрюшинном методе заражения на 60-й день, но культуру выделяли в течение всего срока опыта (100%).
6. Подкожное и внутрибрюшинное заражение M. fortuitum не вызывает у белых мышей патологоанатомических изменений, культура в течение срока исследований не выделялась.
SUMMARY
Results of infection M. kansasii, M. phlei, M. fortuitum, M. xenopi, M. gordonae of guinea pigs and mice by different methods are given here. Have been determined some pathological changes typical for several species.
Литература
1. Гращенкова Щ. В., Зыков М. П. Вирулентность микобактерий туберкулеза, циркулирующих на Крайнем Севере // Пробл. туб. 1984. № 7. С. 51−55.
2. Кассич Ю. Я., Борзяк А. Ф., Кочмарский А. Ф., Мар-тма О.В., Нечваль И. Т., Овдиенко Н. П., Павлас
М., Шаров А. Н., Щуревский В. Е. Туберкулез и меры борьбы с ним. Киев.: Урожай, 1990. 304 с.
3. Н. М. Макаревич. Атипичные микобактерии: методы идентификации, источники выделения, значение в клинике туберкулеза: Автореф. дис. … докт. мед. наук. М., 1973. 31 с.
4. Оттен Т. Ф., Васильев А. В., Микобактериоз. С-Пб, 2005. 218 с.
5. Merone A., Saggiomo G., Severino G., Capone D., De Vincetiis G. Minerva pediat. 2001. 53. № 6. P. 587−590.
6. Seeger I. Vorkommen und Bedeutung atypischer Mykobakterien der Gruppe II nach Runyon bei Schweinen, Huhnern und Hunder. Zbl. Bakt., I Abl. Orig., 1969, 210, 4. S. 517−524.
7. Wolinsky E. Micobacterial diseases osther than tuber-
culosis // Clin. infect. Dis. -1992. Vol. 15. P. 1−12.
УДК 619: 616−074:578. 807. 7:636. 2
Е. А. Гладырь, Н. А. Зиновьева, А. А. Ермилов, В. Н. Виноградов, Л.К. Эрнст
(Вероссийский государственный научно-исследовательский институт животноводства, Экспериментальное хозяйство ОНО «Кленово-Чегодаево»)
СОЗДАНИЕ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ АПРОБАЦИЯ ВЫСОКОЧУВСТВИТЕЛЬНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ДИАГНОСТИКИ ВИРУСА ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
Введение нения такого заболевания крупного рога-
Поиск эффективных путей преодоле- того скота, как лейкоз (ВЛКРС), является
ния проблемы повсеместного распростра- одной из важнейших задач не только вете-

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой