Пути новых сывороточных культуральных питательных сред для выращивания животных клеток и репродукции на них вирусов

Тип работы:
Реферат
Предмет:
Сельскохозяйственные науки


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК ЛИНИИ NGUK-1
Хусаенов Р. Х.
Резюме
Результатами проведенных исследований по хромосомному набору подтверждено соответствие культуры NGUK-1 данной линии клеток.
CYTOGENETIC THE ANALYSIS CULTURES OF CELLS OF LINE NGUK-1
Khysaenov R.K.
Summary
Results of the lead researches on a chromosomal complement confirm conformity of culture NGUK-1 of the given line of cells.
УДК 619: 611. 018. 54:591. 111
ПУТИ НОВЫХ СЫВОРОТОЧНЫХ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ ВЫРАЩИВАНИЯ ЖИВОТНЫХ КЛЕТОК И РЕПРОДУКЦИИ НА НИХ ВИРУСОВ
Цыганова В. Г.
ФГУ «Федеральный центр токсикологической и радиационной безопасности животных», г. Казань
Ключевые слова: культура клеток, репродукция вирусов,
перевиваемая, гидролизатлактальбумина.
Key words: cell culture, rabbit serum, reovirus, reproduction of viruses, hydrolisatlactalbumin
В решении современных как теоретических, так и практических проблем ветеринарной биотехнологии, значительное место занимает культивирование клеток in vitro [1]. Они являются важным объектом при проведении вирусологических, биохимических, молекулярно-генетических и других исследований. В связи с этим актуальна проблема разработки условий наиболее эффективного их выращивания [3].
Необходимо отметить, что во время становления технологии культур клеток для их выращивания использовали сначала простые среды или даже физиологический раствор с применением в качестве биологических добавок сывороток крови животных или гидролизатов животного и растительного происхождения. Наибольшее применение в это время для культивирования клеток имела среда 0,5% гидролизата лактальбумина
(ГЛА) на растворе Хэнкса с добавлением в нее 10% сыворотки крови животных. Данная среда была универсальной для большинства первичных культур клеток сельскохозяйственных животных. Но для отдельных линий клеток млекопитающих, в том числе человека, в дальнейшем разработаны специальные среды, обеспечивающие оптимальный рост этих клеток или возможность их культивирования в бессывороточной среде [2].
В связи с вышеизложенным была проведена работа по экспериментальному обоснованию возможности культивирования перевиваемой линии клеток ЛЭК (легкое эмбриона коровы) на питательной среде, основой которой являлась среда ГЛА. Затем перевиваемую линию клеток ЛЭК, выращенную на экспериментальной среде использовали для репродукции герпесвируса типа I крупного рогатого скота штамм «ТКА-ВИЭВ-В2» и вируса инфекционного ринотрахеита (ИРТ).
Материалы и методы. Исследования проводили в лаборатории культур клеток и гибридомной технологии и вирусологии ФГУ «ФЦТРБ-ВНИВИ».
Тестовую клеточную культуру ЛЭК /ЬБК — перевиваемая культура легкого эмбриона крупного рогатого скота/ культивировали на среде, содержащей 90% ГЛА на основе раствора Хэнкса, 10% сыворотки крови крупного рогатого скота (КРС) с добавлением классического комплекса антибиотиков при 37 °C до получения полного монослоя в течение нескольких последовательных пассажей. В качестве контроля была та же линия клеток, но выращенная на питательной среде согласно каталогу коллекции МЖТБ& quot-^ г. Москва. Инфекционную активность вирусов определяли титрованием в культуре клеток ЛЭК. Титр вируса вычисляли по методу Рида и Менча. Было проведено 4 последовательных пассажа вирусов с последующим определением их титра.
Результаты исследований. Адаптация перевиваемой культуры ЛЭК в лаборатории культур клеток и гибридомной технологии ФГУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» в течение 40 последовательных пассажей к опытной среде привела к появлению в монослое длительно не зарастающих «окон» -признаков цитопатического действия, а также нечеткости клеточных границ (рис. 1). В ходе опытов показано, что при культивировании ЛЭК в ростовой среде на основе ГЛА происходит сдвиг рН в кислую сторону уже через 24ч инкубации. Ростовые среды на основе МЕМ и ГЛА, используемые нами в ходе эксперимента, различаются между собой по значению буферной емкости. Это при длительном культивировании перевиваемых линий клеток на среде Г ЛА может привести к изменениям в хромосомном аппарате и, как следствие, к непредсказуемым изменениям свойств клеток.
1. Монослой ЛЭК через 48ч культивирования на контрольной (А) и опытной (Б) средах. Ок. хЮ, об. *10
На момент заражения герпесвирусом морфология клеточной популяции монослоя культур клеток ЛЭК в опыте отличалась от монослоя, выращенного в контроле наличием дегенерированных клеток. Репродуктивная активность герпесвируса была выше в контроле, ЦПД вируса на культуре клеток ЛЭК с экспериментальной средой проявилось на несколько часов позже и менее интенсивно. В контроле инфекционный титр вируса составил 7,52±0,10 ^ ТЦД50/мл, а при культивировании на культуре клеток ЛЭК, выращенной на опытной среде — 5,72±0,07 ^
ТЦД50/мл.
Показано, что инфекционная активность вируса ИРТ на культуре клеток ЛЭК, выращенных на опытной среде составляла 5,5 ^ ТЦД50/мл, в то время как в контроле она была 6,5 ^ ТЦД50/мл. По литературным данным, вирус ИРТ предпочитает щелочную рН (от 6,0 до 9,0) среду. При репродукции вируса ИРТ на культуре клеток ЛЭК, выращенной с использованием ростовой среды ГЛА, через 72 ч рН становится ниже 6,0, что снижает репродукцию вышеперечисленных инфекционных агентов.
Заключение. Установлена зависимость накопления вируса от состава ростовой среды. Инфекционный титр герпесвируса типа I (штамм «ТК-А (ВИЭВ) — В2») на культуре клеток ЛЭК, выращенной на среде Игла МЕМ, составил на 1,8 ^ ТЦД50/мл выше, чем при культивировании его на ЛЭК, выращенной на среде ГЛА. При культивировании вируса ИРТ было выявлено снижение инфекционной активности на 1 ^ ТЦД50/мл в опыте по сравнению с контролем.
Таким образом, состав ростовой среды не может быть полностью заменен средой ГЛА. Полученные данные являются основанием для прекращения экспериментальной работы по адаптации перевиваемой линии клеток ЛЭК к среде, содержащей 90% ГЛА и 10% сыворотки КРС.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Дьяконов, Л. П. Животная клетка в культуре (Методы и применение в биотехнологии) / Под ред. проф. Л. П. Дьяконова,
проф. В. И. Ситькова — М.: Компания Спутник+, 2000. — 400 с. 2. Методы культивирования клеток/ под ред.: Г. П. Пинаева, М. С. Богдановой. — СПб.: Изд-во Политехн. ун-та, 2008. -278с. 3. Цыренов, В.Ж. Основы
биотехнологии: культивирование клеток человека и животных. Учебнометодическое пособие / В. Ж. Цыренов — Улан-Удэ: ВСГТУ, 2005. — 48 с. 4. Плотникова, ЭМ. Культура клеток тканей из паренхиматозных органов плода коровы/ Международная научно — практ. конф. посвящ. 50 -летию ФГУ «ФЦТРБ ВНИВИ» и биологич. безопасность. Биотехнология: токсикологическая,
радиационная и биологическая безопасность/ Э. М. Плотникова, В. Г. Гумеров, И. М. Ганиев, В. Г. Цыганова, Р. Р. Шарафиева. — Казань-2010. — С. 447- 450. 5. Плотникова, Э. М. Определение фракционного состава белков экстрактов плодов коров, полученных на основе раствора Хэнкса. Международная научно — практ. конф. посвящ. 50 -летию ФГУ «ФЦТРБ ВНИВИ» и биологич. безопасность/ ЭМ. Плотникова, Н. И. Гурьянов, ЕЮ. Хамзина, Р.Х. Хусаенов/ Биотехнология: токсикологическая, радиационная и биологическая безопасность.- Казань-2010. -С. 450−455. 6. Сборник материалов научная программа тезисы / VII Международная конференция «Молекулярная медицина и безопасность» / Плотникова А. М., Хамзина Е Ю., Кириллова Ю. М., Хусаенов Р. Х. — М. -2010, С. 146−147,196.
ПУТИ НОВЫХ СЫВОРОТОЧНЫХ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ ВЫРАЩИВАНИЯ ЖИВОТНЫХ КЛЕТОК И РЕПРОДУКЦИИ НА НИХ ВИРУСОВ
Цыганова В. Г.
Резюме
Определена возможность репродукции вирусов на перевиваемой культуре клеток ЛЭК, выращенной на ростовой среде гидролизатлактальбумина на основе раствора Хэнкса. Установлена зависимость накопления герпесвируса типа I (штамм «ТК-А (ВИЭВ) -В2») от состава ростовой среды. При культивировании вируса ИРТ было выявлено снижение инфекционной активности на 1 lg Тцд50/мл в опыте по сравнению с контролем.
THE OPPOFFUNITY OF A REPRODUCTION OF VIRUSES ON LEK CELL CULTURE HAS BEEN GROWN UP TO MEDIUM OF HYDROLYSATLACTALBUMIN ON THE
BASIS OF THE HANKS SOLUTION
Tsyganova V.G.
Summary
The opportunity of a reproduction of viruses on culture of cells LEK which has been grown up to medium hydrolisatlactalbumin on the basis of a solution of Hanks. It is established, that dependence of accumulation herpes
viruses type I from composition medium. At cultivation virus IRT decrease in infectious activity on 1 lg TCD50/mi in experience in comparison with the control has been revealed.
УДК 619: 616+619. 7+638. 8
РАСПРОСТРАНЕННОСТЬ НЕОПЛАСТИЧЕСКИХ ЗАБОЛЕВАНИЙ У ДЕКОРАТИВНЫХ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦ НА ТЕРРИТОРИИ
г. ПЕРМИ
Чегодаева М. Г., Татарникова Н. А.
ФГОУВПО «Пермская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.Н. Прянишникова»
Ключевые слова: декоративные животные, онкология,
неопластические заболевания.
Key words: decorative animals, oncology, neoplastic diseases.
С каждым годом все больше пермяков заводят наряду с кошками и собаками декоративных животных, которые также подвержены развитию неопластических заболеваний.
Мы собирали статистические данные клиник г. Перми по количеству обращений владельцев декоративных животных и птиц, страдающих онкологическими заболеваниями. Учет проводили за последние пять лет.
Для своей работы использовали журналы учета амбулаторного приема, операций, ультразвуковых исследований, рентгеновской диагностики и эвтаназии животных участковых станций ГУВК & quot-ПСББЖ"-, расположенных во всех районах нашего города. За последние пять лет в нашем городе, значительно увеличилось количество морских свинок, хомячков, волнистых попугайчиков, крыс и декоративных кроликов, которых содержат в семьях в качестве домашних любимцев.
Морские свинки (Cavia porcellus) относятся к грызунам, семейству свинковых. Продолжительность жизни морской свинки составляет 6−8 лет, иногда 15 лет. На территории г. Перми проживает более десятка различных пород. Так в 2005 г за ветеринарной помощью обратились владельцы трех животных, в 2006 — двадцати пяти, в 2009 — двадцати восьми, а в 2010 — более тридцати владельцев морских свинок. Онкологические заболевания диагностируют у этих животных в основном при клиническом осмотре или во время проведения полостных операций. За 2006 г. выявили двух животных с новообразованием молочной железы (8,0%) в возрасте 5 и 7 лет и одну морскую свинку в возрасте 3 лет с новообразованием кожи (4,0%).

ПоказатьСвернуть
Заполнить форму текущей работой