Морфологические изменения у молоди тихоокеанских лососей из естественных водоемов и на рыбоводных заводах Камчатки

Тип работы:
Диссертация
Предмет:
Медицинские науки
Страниц:
178


Узнать стоимость

Детальная информация о работе

Выдержка из работы

Актуальность проблемы. Лососевые рыбы занимают особое положение в системе аквакультуры, которое определяется особенностью их биологии и высокой рыбохозяйственной ценностью (Канидьев, 1984). Они являются традиционным объектом промысла как источник высококачественной пищевой продукции.

Одним из способов пополнения запасов проходных лососей является искусственное разведение, которое имеет определенное преимущество — возможность контроля на всех этапах эмбрионально-личиночного и малькового развития. Это позволяет выращивать потомство с определенными свойствами, нужного размера и качества, обеспечивает повышенную сохранность особей (Канидьев и др., 1970- Петренко, 1976). Выживаемость молоди на рыбоводных заводах составляет обычно 7080% от количества инкубируемой икры, в то время как в естественных условиях эта величина в несколько раз ниже (Канидьев, 1984).

В настоящее время заболевания культивируемых гидробионтов являются одним из главных факторов, сдерживающих развитие мирового искусственного воспроизводства (Щелкунов, 2000, 2004- Ларцева и др., 2004). В результате гибели рыб от болезней аквакультура теряет в среднем до 15−20% продукции и более (Стрелков и др., 2005). Применение в рационе рыб некачественных искусственных кормов и добавок к ним могут привести к алиментарным заболеваниям (Факторович, 1984- Moccia et al., 1984- Мирзоева, 1990- Карасева и др., 1995- 1998- Пугаева и др., 1997- Daskalov et al., 1999- Карасева, 2003). В последние годы увеличивается число заводов, неблагополучных по инфекционным и инвазионным болезням (Бауэр, Мирзоева, 1984- Наумова, Ройтмаи, 1989- Сердюк, 1995- Устимеико, Сергеенко, 2001- Линева, 2004). На многих заводах появляются заболевания, ранее не выявлявшиеся в регионах. Так, на Малкинском лососевом рыбоводном заводе (ЛРЗ) у производителей нерки в 2001 г. впервые на Камчатке был выделен вирус инфекционного некроза гемопоэтической ткани (IHN) (Рудакова, 2001, 2003), а позже на этом же заводе и на ЛРЗ Озерки произошли вспышки заболевания, вызванные этим же патогенным агентом (Гаврюсева, 2004а- Рудакова, 2004а, б- Рудакова и др., 2005).

Носителями и источниками возбудителей болезней, в большинстве случаев, являются половозрелые рыбы естественных популяций, используемые в качестве производителей (Бормотова, Ларцева, 1995- Щелкунов, 2000, 2004). Кроме того, ими могут быть вода, грунт, рыбоводный инвентарь, корма и т. д. (Post, 1987- Сборник инструкций. 1998- Грищенко и др., 1999).

Независимо от их этиологии, патогены приводят к структурным изменениям в тканях, а нередко вызывают и гибель рыб (Бауэр, Мирзоева, 1984- Fish pathol., 1989- Ferguson, 1995- Рудакова, 2004а, б). Для диагностики инфекционных и инвазионных патогенных заболеваний применяются различные методы исследований: вирусологические, бактериологические, паразитологические, гематологические, гистологические и гистохимические. Последние позволяют выявлять болезни на начальной стадии развития и судить о степени воздействия патогенного агента на организм рыб.

С целью оценки состояния здоровья рыб на лососевых рыбоводных заводах ведется эпизоотологический мониторинг. В лаборатории болезней рыб и беспозвоночных КамчатНИРО паразитологические, вирусологические и бактериологические исследования заводской молоди лососей на Камчатке начали проводить с 1996 г., плановые гистологические исследования — с 1999 г. Ранее, в 1984—1994 гг., бактериологическими и паразитологическими методами культивируемых тихоокеанских лососей исследовали в лаборатории СахНИРО (Вялова, Шкурина, 1995). Настоящая работа является первым аналитическим исследованием по определению морфологических изменений, вызванных патогенными агентами различной этиологии, которые были выявлены у молоди тихоокеанских лососей Камчатки разного происхождения.

Цель и задачи исследования. Цель настоящей работы заключалась в оценке состояния здоровья молоди тихоокеанских лососей из естественных водоемов и па рыбоводных заводах Камчатки на основе выявленных морфологических изменений.

Для выполнения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Выявить морфологические изменения в органах и тканях лососевых рыб разного происхождения-

2. Определить степень воздействия различных патогенов на ткани и организм рыб в целом (на состояние здоровья молоди) —

3. Изучить патогенез алиментарного заболевания и инфекционного некроза гемопоэтической ткани у тихоокеанских лососей-

4. Выявить и проанализировать причины, условия и факторы, способствующие возникновению болезней у заводских тихоокеанских лососей-

5. Провести сравнительную оценку заболеваемости у молоди лососей естественного и искусственного воспроизводства.

Научная новизна. Впервые изучены гистопатологические изменения у заводских тихоокеанских лососей на Камчатке при инфекционном некрозе гемопоэтической ткани, алиментарном токсикозе, ихтиофонозе, ихтиободозе (костиозе), бактериальной жаберной болезни. Впервые описан патогенез алиментарного заболевания у тихоокеанских лососей, выращиваемых на рыбоводных заводах Камчатки. Проанализирована динамика морфологических изменений при инфекционном некрозе гемопоэтической ткани (IHN) у мальков нерки на двух рыбоводных заводах в период эпизоотии. Впервые описаны гистопатологические изменения при экспериментальном заражении IHN мальков кеты и нерки. Дана сравнительная характеристика состояния органов и тканей молоди лососей искусственного и естественного происхождения с использованием статистической обработки данных.

Практическое значение. Результаты исследований позволяют дать оценку состояния здоровья рыб разного происхождения, а также эпизоотической ситуации на рыбоводных заводах и в естественных водоемах Камчатки. Оказана научно-консультативная помощь в диагностике болезней культивируемых рыб, особенно, алиментарных и микозных. Подтверждение диагноза инфекционного некроза гемопоэтической ткани у нерки на двух лососевых рыбоводных заводах (Малкинский и Озерки) в 2002 и в 2004 гг. послужило основой для уничтожения зараженной молоди, что препятствовало дальнейшему распространению инфекции на заводах и в природных популяциях. Полученные данные о морфологических изменениях, вызываемых патогенными агентами различной этиологии на рыбоводных заводах Камчатки, помогут судить о тяжести заболеваний и ущербе, наносимом здоровью тихоокеанских лососей. Обнаруженные гистопатологические изменения позволяют определить диагностические признаки заболеваний. Количественные показатели (индекс гистопатологических изменений органов, показатель суммарного усредненного состояния организма), использованные при оценке состояния здоровья тихоокеанских лососей могут быть применены для расширенного анализа лососевых рыб из естественных водоемов. Определение уровня потенциальной смертности во время эмбриогенеза и раннего онтогенеза от возбудителей болезней позволило бы корректировать прогноз численности тихоокеанских лососей. Представленные дополнения к мерам профилактики и контроля инфекционного некроза гемопоэтической ткани IHNV и Ichthyophonus hoferi направлены на ограничение проникновения этих патогенных агентов на заводы и развития эпизоотий, и, таким образом, способствуют повышению эффективности искусственного воспроизводства тихоокеанских лососей. Материалы диссертации могут быть использованы в лекционных курсах и на практических занятиях по ихтиопатологии лососевых рыб.

Структура диссертации. Диссертация состоит из введения, трех глав, заключения, выводов, списка литературы и содержит 14 таблиц, 18 рисунков. Список использованной литературы включает 345 источников, в том числе иностранных 207. Общий объем работы — 178 страниц.

выводы

1. Результаты гистологических и гистохимических исследований свидетельствуют, что состояние здоровья у молоди кеты, чавычи, кижуча в реках Авача, Паратунка и басссейне р. Большая удовлетворительное. Деструктивные изменения, вызванные патогенными агентами различной этиологии, носят локальный характер.

2. У тихоокеанских лососей, выращиваемых на рыбоводных заводах Камчатки, выявлены болезни различной этиологии: алиментарные — липоидная и цероидная дегенерация печени- паразитарные — ихтиободоз- микозные — ихтиофоноз. Подтвержден диагноз инфекционного некроза гемопоэтической ткани и бактериальной жаберной болезни.

3. Патологии алиментарного характера у культивируемых лососей протекают в хронической форме и связаны с тем, что заводская молодь получает несбалансированные или недоброкачественные корма. Степень тяжести деструктивных изменений варьирует в зависимости от вида рыб, длительности кормления и температуры выращивания. При заводском воспроизводстве кета является более устойчивым к различным болезням видом.

4. Наиболее опасным заболеванием был инфекционный некроз гемопоэтической ткани, вызвавший эпизоотии у мальков нерки на двух заводах. Хотя это заболевание на заводах протекало по-разному, в органах и тканях нерки отмечали аналогичные гистопатологические изменения. Визуальные и гистопатологические признаки при естественной эпизоотии у молоди нерки и искусственном заражении IHNV мальков кеты и нерки схожи.

5. При отсутствии вирусологического тестирования наличие некротических изменений в гемопоэтической ткани почки и селезенки, компактном слое желудочно-кишечного тракта, жабрах и поджелудочной ткани дает возможность использовать его для постановки предварительного диагноза IHN.

6. Эпизоотическую обстановку в водоемах Камчатки в отношении наиболее опасных, сертифицируемых видов паразитов и бактерий у молоди лососей из естественных водоемов можно считать благополучной. В отношении вирусных инфекций исключение составляет бассейн р. Большая, являющийся неблагополучным по инфекционному некрозу гемопоэтической ткани.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В соответствии с поставленной целью и задачами проведены морфологические исследования молоди лососевых рыб из естественных водоемов (р. Авача, Паратунка, бассейне р. Большая и оз. Большой Вилюй) и на 5 лососевых рыбоводных заводах Камчатки. Использование количественных показателей, индекса гистопатологических изменений органов и показателя суммарного усредненного состояния организма, позволило провести сравнительную оценку здоровья молоди лососей разного происхождения. У особей из естественных водоемов обнаружены незначительные гистопатологические изменения, которые носили локальный характер.

В результате многолетних гистологических исследований у заводской молоди рыб были выявлены и/или подтверждены вирусные (инфекционный некроз гемопоэтической ткани), бактериальные (бактериальная жаберная болезнь), паразитарные (ихтиободоз), микозные (ихтиофоноз) и алиментарные заболевания. Последние являются наиболее характерными для тихоокеанских лососей в аквакультуре Камчатки и, как правило, протекают в хронической форме. Степень тяжести деструктивных изменений варьирует в зависимости от вида рыб, длительности кормления и температуры воды. Патологии алиментарной природы наиболее выражены у чавычи. Самая благополучная ситуация у молоди кеты. В большинстве случаев, обнаруженные деструктивные изменения являются обратимыми, хотя существенно ослабляют сопротивляемость организма рыб, и как следствие, оказывают негативное влияние на готовность молоди к покатной и океанической миграции, а также увеличивают их восприимчивость к заболеваниям различной этиологии.

При ихтиободозе деструктивные изменения в респираторном эпителии жабр и эпидермальном слое кожи вызывали нарушения жаберного и кожного дыхания, результатом чего явился повышенный отход рыб. Первоначально при бактериальной жаберной болезни у кеты и кижуча ВЛРЗ в жабрах и коже отмечали сходные гистопатологические изменения, однако заболевание более тяжело протекало у кижуча: при прогрессировании болезни регистрировали структурные нарушения желудочно-кишечного тракта и присоединение вторичной микрофлоры. Вероятнее всего, этот вид не выносит больших плотностей посадки и очень чувствителен к качеству воды. При ихтиофонозе (хроническая форма) характерные гранулемы, которые образуются вокруг покоящихся спор гриба, чаще всего встречаются в хорошо васкуляризированных органах. Замещение нормальной ткани сердца, селезенки, почки и печени ретикуло-эндотелиальной грануляционной тканью приводит к циррозу и атрофии.

Наиболее опасным заболеванием был инфекционный некроз гемопоэтической ткани, вызвавший эпизоотии мальков нерки на МЛРЗ (2002 г.) и ОЛРЗ (2004 г.). Болезнь протекала в острой форме. Воротами для данной инфекции являются жабры, желудочно-кишечный тракт и поврежденные кожные покровы. Вирус размножается и распространяется через соединительную ткань органов и гематогенным путем. В результате инфекции, прежде всего, поражается гемопоэтическая ткань почки и селезенки. В дальнейшем, деструктивные изменения почечных канальцев и клубочков вызывают нарушение водно-солевого гомеостаза и интоксикацию организма рыб, приводя к жировой и цероидной дегенерации печени. При генерализации инфекции поражаются практически все органы и ткани. Происходит выход крови в окружающие ткани и полость тела, некроз клеток желудочно-кишечного тракта, жировой ткани, скелетной мускулатуры, сердца, хрящевой ткани, реже — головного мозга. Инфицированные рыбы выделяют вирус с мочой, слизистыми выделениями кишечника, через жабры, кожу и ткани плавников.

При гистологическом исследовании молоди нерки на двух заводах в период эпизоотии инфекционного некроза гемопоэтической ткани, а также кеты и нерки, экспериментально зараженных вирусом IHNV, выявили аналогичные внешние признаки патологии и гистопатологические изменения в органах и тканях. Учитывая недостаточное количество диагностических ихтиовирусологических лабораторий в России, наличие некротических изменений в гемопоэтической ткани почки и селезенки, компактном слое желудочно-кишечного тракта, жабрах и поджелудочной ткани, наряду с гематологическими исследованиями (Рудакова, 2004), может служить предварительным диагнозом инфекционного некроза гемопоэтической ткани. В дальнейшем необходимо выявить патологические изменения при воздействии вируса IHN на другие виды тихоокеанских лососей (чавыча, кижуч), которые являются объектами искусственного разведения на Камчатке.

Для сохранения здоровья и предотвращения возникновения эпизоотии у заводской молоди тихоокеанских лососей очень важна ранняя диагностика заболеваний. Необходимо строго соблюдать технологические требования, описанные в Инструкции по болезням рыб. Для устранения патологического ожирения печени в рацион заводских рыб следует добавлять свежий корм, но для предотвращения заражения рыб патогенами (например, ихтиофонозом) его необходимо подвергать термической обработке. Обязательным также является применение антидотных препаратов: метиленового синего, хитозана. Чтобы избежать эпизоотии инфекционного некроза гемопоэтической ткани у рыб, кроме вышеуказанных мер, предлагаем использовать рекомендации, изложенные в & quot-Руководстве по искусственному воспроизводству нерки на Аляске& quot- (Alaska sockeye salmon., 1994) и настоящей диссертации.

ПоказатьСвернуть

Содержание

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Воспроизводство тихоокеанских лососей на Камчатке.

1.1.1. Естественное воспроизводство.

1.1.2. Искусственное разведение.

1.2. Болезни лососей.

1.2.1. Вирусные инфекции.

1.2.2. Бактериальные болезни.

1.2.3. Микозные заболевания.

1.2.3. Паразитарные инвазии.

1.2.4. Алиментарные болезни.

1.2.5. Кардиомиопатический синдром.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ.

2.1. Объекты исследования.

2.2. Морфологические и гистохимические методы.

2.3. Исследование условий содержания заводской молоди.

2.4. Биопробы для подтверждения этиологии инфекционного некроза гемопоэтической ткани.

2.5. Статистическая и математическая обработка данных.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ.

3.1. Биологические показатели молоди тихоокеанских лососей разного происхождения.

3.1.1. Естественные водоемы.

3.1.2. Рыбоводные заводы.

3.2. Патология молоди лососевых рыб.

3.2.1. Гистопатологические изменения в органах и тканях у лососей из естественных водоемов, на рыбоводных заводах и при адаптации выращиваемых рыб к естественным условиям.

3.2.2. Ихтиободоз.

2.3. Бактериальная жаберная болезнь.

2.4. Ихтиофоноз.

2.5. Инфекционный некроз гемопоэтической ткани.

3. Сравнительная характеристика состояния органов и тканей молоди лососей разного происхождения.

3.1. Молодь из естественных водоемов.

3.2. Заводская молодь.

Список литературы

1. Бауер О. Н., Мирзоева Л. М. Инвазионные заболевания лососевых, их профилактика и терапия. Обзорная информация // Рыбохозяйственное использование внутренутренних водоемов. М.: ЦНИИТЭИРХ, 1984. Вып. 12. С. 1−64.

2. Банина Н. Н., Куденцова Р. А., Брагина Е. В. Эпистилезы и некоторые другие случаи массового поражения перитрихами рыб и икры // Изв. ГосНИОРХ. 1977. Т. 119. С. 107−109.

3. Богданова Е. А. О возбудителе вертежа в районах, прилежащих к северной части Тихого океана // Вопросы морской паразитологии: Материалы I Всесоюзного симпозиума по паразитам и болезням морских животных. Киев: Наукова Думка, 19 706. С. 5−7.

4. Бормотова С. В., Ларцева Л. В. Санитарное состояние аквакультурыосетровых и среды их обитания // Аквакультура. М.: ВНИИЭРХ, 1995. Вып. 2. С. 1−7.

5. Боровиков В. STATISTICA. Искусство анализа данных на компьютере: Для профессионалов. 2-е изд. Спб.: Питер, 2003. 688 с.

6. Бычкова Л. И. Микробиоценоз радужной форели (Oncorhynchus mykiss) и водной среды при садковом выращивании // Автореф. дис. канд. биол. наук. М. :1. ВНИИПРХ, 2002. 25 с.

7. Бугаев В. Ф. Азиатская нерка (пресноводный период жизни, структура локальных стад, динамика численности). М.: Колос, 1995. 464 с.

8. Валова В. Н. Использование протеолитических ферментов в лососеводстве // Рыбное хоз-во. 1998. № 1. С. 44−45.

9. Варнавский B.C. Участие почек в ионной регуляции у молоди нерки Oncorhynchus nerka (Walbaum) озера Дальнее в связи с процессом смолтификации // Рыбы в экосистемах лососевых рек Дальнего Востока. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1981. С. 161−167.

10. Вейдемейер Г. А., Мейер Ф. П., Смит JI. Стресс и болезни рыб. М.: Легкая и пищевая пром-сть, 1981. 127 с.

11. Введенская Т. Л. Пищевые рационы рыб в литорали оз. Дальнего // Исследования биологии и динамики численности промысловых рыб Камчатского шельфа. Сб. науч. тр. КамчатНИРО. Петропавловск-Камчатский, 1993. Вып. 2. С. 130−139.

12. Ветеринарное законодательство. Т. 1. -М.: Росзооветснабпром, 2000. 248 с.

13. Волобуев В. В., Рогатных А. Ю. Эколого-морфологическая характеристика кижуча Oncorhynchus kisutch (Walbaum) (Salmonidae) материкового побережья Охотского моря//Вопр. ихтиологии. 1982. Т. 22, вып.6. С. 974−980.

14. Вронский Б. Б. Сезонные расы чавычи (Oncorhynchus tschawytscha Walb.) в бассейне р. Камчатки // Биологические проблемы Севера, Магадан, октябрь 1983 г.: Тезисы докладов X Всесоюзного симпозиума. -Магадан: ИБПС, 1983. Ч. 2. С. 159.

15. Вялова Г. П. Гематологические показатели молоди кеты при алиментарном заболевании // Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. М., 1987. Вып. 50. С. 122−129.

16. Вялова Г. П., Воронин В. Н. Микроспоридиоз лососевых Сахалина: распространении и динамика зараженности // Паразитология. JL: Наука, 1987. Т. 21. С. 553−557.

17. Гаврюсева Т. В. Гистопатологические изменения при инфекционном некрозе гемопоэтической ткани (IHN) у мальков нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) на Малкинском ЛРЗ в период эпизоотии // Вопросы рыболовства. 2004а. Т. 5. № 1(17). С. 132−146.

18. Гидрогеология СССР. Том 29. Камчатка, Курильские и Командорские острова. Южно-Камчатская геологоразведочная экспедиция. -М.: Недра, 1972. 364 с.

19. Глаголева Т. П., Бодрова Т. Н. Диагностическое значение гематологического анализа у лососевых видов рыб: Корма и методы кормления объектов марикультуры. -М.: ВНИРО, 1988. С. 121−127.

20. Головин П. П. Основные болезни осетровых рыб в товарных индустриальных хозяйствах и меры борьбы с ними // Проблемы современного товарного осетроводства: Сборник докладов Первой научно-практической конференции. -Астрахань: Биос, 2000. С. 475−476.

21. Головина Н. А. Морфофункциональная характеристика крови рыб — объектов аквакультуры. Автореф. дис. докт. биол. наук. М.: ВНИРО, 1996. 53 с.

22. Государственный водный кадастр. Многолетние данные о режиме и ресурсах поверхностных вод суши РСФСР. Бассейны рек Камчатской области. Д.: Гидрометоиздат, 1987. Т. 1, вып. 18. 385 с.

23. Государственный доклад & quot-О состоянии природной окружающей среды

24. Камчатской области в 1998 году". -Петропавловск-Камчатский, 1998. 158 с.

25. Грищенко Л. И., Акбаев М. Ш., Васильков Г. В. Болезни рыб и основы рыбоводства. -М: Колос, 1999. 456 с.

26. Донецков В. В. Влияние эпизоотии ихтиофоноза на популяцию атлантическо-скандинавской (норвежской весеннее-нерестующей) сельди (Clupea harengus harengus L.). Автореф. дис. канд. биол. наук. М.: МГТА, 2004. 22 с.

27. Дрожжи кормовые. Технические условия. ГОСТ 20 083–74. М.: Изд-во стандартов, 1989. 17 с.

28. Дрожжи кормовые паприн. Технические условия. ГОСТ 28 179–89. — М.: Изд-во стандартов, 1989. 5 с.

29. Ермоленко А. В. Возбудители инвазионных заболеваний пресноводных рыб Приморского края. Владивосток: ДВО АН СССР, 1990. 82 с.

30. Заварина Л. О. Некоторые данные по биологии молоди кеты Oncorhynchus keta (Walb.) р. Камчатки // Исследования биологии и динамики численности промысловых рыб Камчатского шельфа. Сб. науч. тр. КамчатНИРО. -Петропавловск-Камчатский, 1993. Вып. И. С. 67−74.

31. Запорожец О. М. Этолого-физиологические и экологические аспекты искусственного воспроизводства тихоокеанских лососей Автореф. дис. докт. биол. наук. -М.: ВНИИПРХ, 2002. 52 с.

32. Зорбиди Ж. Х. Суточный ритм питания кижуча Oncorhynchus kisutch (Walbaum) озера Азабачьего // Вопр. ихтиол. 1977. Т. 17, вып. 1. С. 182−184.

33. Исси И. В. Микроспоридии. Протозоология. Л.: Наука, 1986. № 10. С. 3−121.

34. Ихтиопатология. -М.: Пищевая пром-сть, 1977. 431 с.

35. Канидьев А. Н. Биологические основы искусственного разведения лососевых рыб. М.: Легкая и пищевая пром-сть, 1984. 216 с.

36. Канаев А. И. Новая технология зимовки рыб. М.: Колос, 1976. 126 с.

37. Канидьев А. Н., Салмин С. А., Коспонин Г. М. Заводское разведение горбуши и кеты как способ повышения запасов лососей Сахалина // Вопр. ихтиол. 1970. Т. 10, вып. 2(61). С. 360−361.

38. Карасева Т. А. Болезни рыб в аквакультуре севера России (на примере Кольского полуострова). Автореф. дис. канд. биол. наук. Петрозаводск: Петрозав. гос. унив., 2003. 22 с.

39. Карасева Т. А., Альтов А. В., Донецков В. В. Болезни искусственно выращенной горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Walb.) // Паразиты и болезни морских пресноводных рыб Северного бассейна. Сб. науч. тр. ПИНРО. Мурманск, 1998. С. 103−104.

40. Карманова И. В. Паразиты тихоокеанских лососей в эпизоотической обстановке паразитозов в бассейне реки Паратунки (Камчатка). Автореф. дис. канд. биол. наук. М.: Ин-т Паразитол. РАН, 1998. 23 с.

41. Карманова И. В., Рудакова C. JL, Гаврюсева Т. В., Устименко Е. А., Сергеенко Н. В., Линева Г. П., Корнеева С. А. Инфекционные и инвазионные возбудители болезней рыб в аквакультуре (Камчатка) // Болезни рыб. М.: Спутник, 2004. Вып. 79. С. 97−104.

42. Карпенко В. И. Ранний морской период жизни тихоокеанских лососей. М.: ВНИРО, 1998. 165 с.

43. Карпенко В. И., Николаева Е. Т. Суточный ритм питания и рационы молоди кеты Oncorhynchus keta в речной и ранний морской периоды жизни // Вопр. ихтиол. 1989. Т. 29, вып. 2. С. 318−325.

44. Кондратюк В. И. Климат Камчатки. -М.: Гидрометеоиздат, 1974. 201 с.

45. Крохин Е. М., Крогиус Ф. В. Очерк бассейна р. Большой и нерестилищ лососевых, расположенных в нем // Изв. ТИНРО. 1937. Т. 9. 80 с.

46. Коновалов С. М. Дифференциация локальных стад нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum). Л.: Наука, 1971. 228 с.

47. Куренков И. И. Зоогеография пресноводных рыб Камчатки // Вопр. географии Камчатки. 1965. Вып. 3. С. 25−34.

48. Лабораторный практикум по болезням рыб. -М.: Наука, 1983. 295 с.

49. Ларцева Л. В. Рыбы и гидробионты — переносчики возбудителей инфекционных болезней. Астрахань: Изд-во КаспНИРХ, 2003. 100 с.

50. Ларцева Л. В., Металлов Г. Ф., Проскурина В. В., Болдырева Я. М., Лисицкая И. А. Ихтиопатологические исследования производителей севрюги в дельте Волги // Болезни рыб. Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. -М.: Спутник, 2004. Вып. 79. С. 120−126.

51. Мирзоева Л. М. Алиментарные болезни рыб: Обзорная информация // Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов. М.: ЦНИИТЭИРХ, 1990. Вып. 4. 68 с.

52. Мирзоева Л. М. Патологии рыб, вызванные дефицитом и избытком жирорастворимых витаминов // Болезни рыб. М.: ВНИИЭРХ, 1997. Вып. 2. С. 1−12.

53. Мирзоева Л. М. Болезни рыб при индустриальном выращивании. Обзорная информация // Болезни гидробионтов в аквакультуре. М.: ЦНИИТЭИРХ, 2000а. Вып. 1. С. 1−60.

54. Мирзоева Л. М. Иммуномодулирующие пищевые добавки для аквакультуры. Обзорная информация // Болезни гидробионтов в аквакультуре. М.: ЦНИИТЭИРХ, 20 006. Вып. 2. С. 21−25.

55. Наумова A.M., Ройтман В. А. Паразитарные болезни разводимых рыб и их профилактика // Зоопаразитология: Итоги науки и техники. М.: ВИНИТИ, 1989. Т. 10. С. 1−212.

56. Нейш Г. А., Хьюз Г. С. Микозы рыб. -М.: Легкая и пищевая пром-сть, 1984. 96 с.

57. Николаева Е. Т. Некоторые данные о росте и питании мальков камчатской кеты в нерестово-выростных водоемах // Изв. ТИНРО. 1968. Т. 64. С. 91−100.

58. Николаева Е. Т. Размерно-весовая характеристика и питание кеты в устьях камчатских рек//Изв. ТИНРО. 1972. Т. 82. С. 153−164.

59. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Паразитические простейшие / Под ред. О. Н. Бауэр и др. Л.: Наука, 1984. Вып. 143, т. 1, ч. 1. 431 с.

60. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Паразитические многоклеточные / Под ред. О. Н. Бауэр и др. Л.: Наука, 1987. Вып. 149, т. 3, ч. 2. 577 с.

61. Остроумов А. Г. Нерестовый фонд лососей (Oncorhynchus) в бассейне озера Паланского // Исследования биологии и динамики численности промысловых рыб Камчатского шельфа. Сб. науч. тр. КамчатНИРО. Петропавловск-Камчатский, 1993. Вып. II. С. 100−106.

62. Пальцев М. А., Аничков Н. М. Патологическая анатомия. Т. 1. М.: Медицина, 2001. 528 с.

63. Петренко Л. А. Эффективность искусственного воспроизводства атлантического лосося // Тр. ГосНИОРХ. 1976. Т. 112. С. 3−21.

64. Перечень карантинных и особо опасных болезней рыб. Приложение к Приказу Минсельхоза России № 173 от 29. 09. 2005 г.

65. Пугачев О. Н., Хохлов П. П. Микроспоридии рода Myxobolus паразиты головного и спинного мозга лососевых рыб // Систематика и экология рыб континентальных водоемов Дальнего Востока. — Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1979. С. 137−139.

66. Ресурсы поверхностных вод СССР. Гидрологическая изученность. Камчатка. -Л.: Гидрометеоиздат, 1966. Т. 20. 505 с.

67. Рудакова С. Л. Некроз гемопоэтической ткани у производителей нерки и предполагаемые источники инфекции // Вопр. рыболовства. 2003. Т. 4, № 1(13). С. 93−102.

68. Рудакова С. Л. Состояние здоровья популяций лососей на Камчатке и воздействие на них вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани // Автореф. дис. канд. биол. наук. Петрозаводск: Петрозав. гос. ун-т, 2004а. 24 с.

69. Рудакова С. Л. Анализ развития эпизоотии, вызванной вирусом инфекционного некроза гемопоэтической ткани (IHNV) у мальков нерки Oncorhynchus пегка. при искусственном выращивании (Камчатка) // Вопр. рыболовства. 20 046. Т. 5, № 2(18). С. 362−374.

70. Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. / Под ред. Н. А. Яременко. -М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1998. 307 с.

71. Семенченко А. Ю. Приморская сима (Популяционная экология, морфология, воспроизводство). Владивосток: ДВО АН СССР, 1989. 192 с.

72. Сердюк А. В. Инфекционные заболевания лососевых рыб Северо-Запада России // Проблемы товарного выращивания лососевых рыб России: Сборник докладов Всероссийского совещания, Мурманск, 1−4 августа 1995 г. Мурманск: ПИНРО, 1995. С. 84−88.

73. Сметанин А. Н. Нерестовые реки Камчатки на пороге экологического кризиса // Природоохранительные территории в акватории Дальнего Востока и проблемы сохранения биологического разнообразия. Владивосток: Изд-во Дальневост. ун-та, 1991. С. 54−57.

74. Смирнов А. И. Биология, размножение и развитие тихоокеанских лососей. -М.: МГУ, 1975. 334 с.

75. Смирнов Б. П., Кляшторин Л. Б. Осморегуляция у молоди кеты при изменениях температуры и солености // Эколого-физиологические и токсикологические аспекты и методы рыбхозяйственных исследований. -М.: ВНИРО, 1990. С. 82−102.

76. Смирнов Б. П., Чебанова В. В., Введенская Т. В. Адаптация заводской молоди кеты Oncorhynchus keta и чавычи О. tschawytscha к питанию в естественной среде и влияние голодания на физиологическое состояние молоди // Вопр. ихтиол. 1993. Т. 33, № 5. С. 637−643.

77. Соколов В. Д., Андреева Н. Л. Фармакологическая коррекция стресса // Ветеринария. 1989. № 5. С. 61−64.

78. Справочник ветеринарного врача-ихтиопатолога. / Под ред. П. П. Соторова.

79. М.: Росзооветснабпром, 1999. С. 66−78.

80. Струков А. И., Серов В. В. Патологическая анатомия. М.: Медицина, 1995. 564 с.

81. Сынкова А. И. О питании тихоокеанских лососей в камчатских водах // Изв. ТИНРО. Владивосток. 1951. Т. 34. С. 105−121.

82. Толстяк Т. И. Влияние искусственных условий выращивания на физиологическое состояние молоди красной // III Всесоюзное совещание по лососевидным рыбам, Тольятти, март 1988 г.: Тезисы докладов. Тольятти: ИЭВБ, 1988. С. 333−336.

83. Факторович К. А. Опыт оценки некоторых диет для лосося по данным гистологического анализа печени // Изв. ГосНИОРХ. 1961. Т. 51. С. 37−46.

84. Факторович К. А. Алиментарные заболевания рыб // Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб. -М.: Наука, 1984. С. 144−159.

85. Хлебнова Е. Ю., Абросимов С. С. Изменение липидного и жирнокислотного обмена при некоторых заболеваниях рыб // Болезни рыб. М.: Спутник, 2004. Вып. 79. С. 176−182.

86. Чепурная А. Г. Эколого-паразитологический мониторинг рыб в прудовых хозяйствах дельты Волги // Болезни рыб. М.: Спутник, 2004. Вып. 79. С. 183−189.

87. Черешнев И. А. Биологическое разнообразие ихтиофауны Северо-Востока России. Владивосток: Дальнаука, 1996. 197 с.

88. Черешнев И. А., Волобуев В. В., Шестаков А. В., Фролов С. В. Лососевидные рыбы Северо-Востока России. Владивосток: Дальнаука, 2002. 496 с.

89. Шестерин И. С., Ильин А. И. Применение аминокислотно-витаминных смесей для улучшения здоровья рыб // Аквакультура и здоровье рыб: Тезисы докладов Первого российско-американского симпозиума, Москва, 12−19 июля 1998 г. М.: ВНИИПРХ, 1998. С. 176−177.

90. Шкурина З. К., Вялова Г. П. Бактериальные болезни лососей Сахалина // Болезни гидробионтов в аквакультуре. М: ЦНИИТЭИРХ, 2000. Вып. 2. С. 6−16.

91. Ыун А. Е., Щукина B.C. Диагностика вибриоза у рыб // Ветеринария. М.: Наука, 1979. № 11. С. 40−43.

92. Щелкунов И. С. Ихтиопатология на пороге XXI века // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тезисы докладов научно-практической конференции, Москва, 21−22 ноября 2000 г. М.: Россельхозакадемия, 2000. С. 26−28.

93. Щелкунов И. С. Весенняя виремия и другие рабдовирусные болезни рыб: от иммунологических к молекулярно-генетическим методам диагностики // Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб: Расширенные материалы

94. Всероссийской научно-практической конференции, Борок, 16−18 июля 2003 г. М.: ООО & quot-Авоська"-, 2004. С. 38904.

95. Юхименко JI.H., Смирнов Л. П., Койдан Г. С., Гусева Н. В. Специфическая профилактика бактериальной геморрагической септицемии (аэромоноза) рыб // Болезни рыб. М.: ВНИИЭРХ, 1998. Вып. 2. С. 14−21.

96. Юхименко Л. Н., Смирнов Л. П., Койдан Г. С., Гаврилин К. В., Бычкова Л. И. Иммунопрофилактика бактериальной геморрагической септицемии (аэромоноза) рыб // Болезни рыб: Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. М.: Спутник, 2004. Вып. 79. С. 223 227.

97. Alaska sockeye salmon culture manual // Special Fish. Rep. V. 6. Anchorage: Alaska Dep. Fish Game. Div. Commer. Fish. Manag. Develop. Alaska, 1994. P. 1−40.

98. Amend D.F. Infectious hematopoietic necrosis (IHN) virus disease // U.S. Fish Wildl. Serv. Fish Dis. 1984. P. 1−39.

99. Amend D.F., Yasutake W.T., Mead R.W. A hematopoietic virus disease of rainbow trout and sockeye salmon // Trans. Amer. Fish. Soc. 1969. V. 98. P. 796−804.

100. Amend D.F., Pietsch J.P. Virucidal activity of two iodophores to salmonid viruses // J. Fish. Res. Bd. Can. 1972. V. 29. P. 61−65.

101. Amin A.B., Mortensen L., Poppe T. Histology atlas normal structure of Salmonids. Oslo: Akvapatologisk Labor. AS BOD0, 1992. 222 p.

102. Amlacher E. Textbook of fish diseases. Neptune City, New Jersey: T.F.H. Publications, 1970. 302 p.

103. Anderson J.W., Conroy D.A. Vibrio disease in fishes // Amer. Fish. Soc. Spec. Publ. 1970. V. 5. P. 266−272.

104. Austin В., Austin D.A. Methods for the microbiological examination of fish and shellfish. Edinburgh: Depart. Biol. Sci. Heriot — Watt Univ., Edinburgh EH-IIHX, 1989. P. 69−97.

105. Austin В., Austin D.A. Bacterial fish pathogens: Disease in farmed and wild fish. -New York- London- Toronto: Ellis Horwood Ld., 1993. P. 265−278.

106. Awakura T. Studies on the microsporidian infection in salmonid fishes // Sci. Rep. Hokkaido Fish Hatchery. 1974. V. 29. P. 1−96.

107. Awakura T. A new epizootic of a microsporidiosis of salmonids in Hokkaido, Japan // J. Fish Pathol. 1978. V 13, № 1. P. 17−18.

108. Bancroft D., Stevens A., Turner D.R. Theory and practice of histological techniques. Edinburgh- London- Melbourne- New York: Churchill Livingstone Inc., 1990. 725 p.

109. Bangyeekhun E., Pylkkoe P., Vennerstroem P., Kuronen H. Prevalence of a single fish-pathogenic Saprolegnia sp. clone in Finland and Sweden // Dis. Aquat. Org. 2003. V. 53, № l.P. 47−53.

110. Banner C.R., Long J.J., Rohovec J.S. Occurrence of salmonid fish infected with Renibacterium salmoninarum in the Pacific Ocean // J. Fish Dis. 1986. V. 9. P. 273−275.

111. Bartolomew J.L., Rohovec J.S., Fryer J.L. Ceratomyxa shasta, a myxosporean parasite of salmonids // U.S. Fish Wildl. Serv., Fish Disease Leaflet 80. 1989. P. 1−8.

112. Bartolomew J.L., Fryer J.L., Rohovec J.S. Ceratomyxa shasta infection of salmonid fish // Proceedings of the International symposium of salmonid diseases. Sapporo, 21−25 October 1991. Sapporo: Hokkaido Univ. Press, 1992. P. 267−275.

113. Billi J.L., Wolf К. Quantitative comparison of peritoneal washes and feces for detecting infectious pancreatic necrosis (IPN) virus in carrier brook trout // J. Fish. Res. Bd. Can. 1969. V. 26. P. 1459−1465.

114. Blue book. Suggested procedures for the detection and identification of certain finfish and shellfish pathogens. Fish Health Section. Bethesda, MD: Amer. Fish. Soc., 1994. 294 p.

115. Brun E., Poppe Т., Skrudland A., Jarp J. Cardiomyopathy syndrome in farmed Atlantic salmon Salmo salar. occurrence and direct financial losses for Norwegian aquaculture // Dis. Aquat. Org. 2003. V. 56, № 3. P. 241−247.

116. Bruno D.W. Whirling disease // Aquaculture Information Serv. Alberdeen: Scottish Office Agriculture and Fisheries Department, 1991. V. 13.4 p.

117. Bruno D.W., Poppe T.T. A colour atlas of salmonid diseases. London: Harcourt Brace and Co. Publ., 1996. 186 p.

118. Bucke D. Cataracts in farmed fish — a multidisciplinary initiative for scientific progress: histological techniques for teleost eyes // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1998. V. 18. P. 121−123.

119. Bullock G.L. Studies on selected myxobacteria pathogenic for fishes and on bacterial gill disease in hatchery reared salmonids // U.S. Fish Wildl. Serv. Tech. Pap. 1972. V. 85. P. 1−30.

120. Bullock G.L., Conroy D.A. Vibrio diseases // Disease of fishes. Bacterial diseases of fishes. Jersey City, New York: T. FEAP Publications, 1971. P. 42−50.

121. Burke J., Grischkowsky R. An epizootic caused by infectious haematopoietic necrosis virus in an enhanced population of sockeye salmon, Oncorhynchus nerka (Walbaum), smolts at Hidden Creek, Alaska // J. Fish Dis. 1984. V. 7, № 5. P. 42129.

122. Buxton A., Fraser G. Animal microbiology, immunology, bacteriology, mycology. Diseases of fish and laboratory methods. Oxford- London- Edinburgh- Melbourne: Blackwell Scient. Publ., 1974. V. 1. P. 327−336.

123. Chen S.N., Kou G.N., Hedrick R.P., Fryer J.L. The occurrence of viral infections of fish in Taiwan. // Fish and Shellfish Pathology. New York: Academic Press, 1985. P. 313−319.

124. Comps M., Raymond J.C., Plassiart G.N. Rickettsia-like organism infecting juvenile sea-bass Dicentrarchus labrax II Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1996. V. 16 (1). P. 30−33.

125. Cowey C.B., Knox D., Adron J.W. The production of renal calcinosis by magnesium deficiency in rainbow trout (Salmo gairdneri) // British J. Nutrition. 1977. V. 38. P. 127−135.

126. Crosa J.H., Schiewe M.H., Falkow S. Evidence for plasmid contribution to the virulence of the fish pathogen Vibrio anguillarum И Infect. Immunol. 1977. V. 18. P. 509 513.

127. Crondel J.L., Boesten J.A. The influence of antibiotics on the immune system. Inhibition of the mitogenic leucocyte response in vitro by oxytetracycline // Develop. Сотр.1. munol. Suppl. 1982. V. 2. P. 211−216.

128. Culling C.F.A., Allison R.T., Barr W.T. Cellular pathology technique. London: Co. Publ. LTD, 1985. P. 3−163.

129. Daelman W. Animal health policy in aquaculture in the EEC // Diseases of Fish and Shellfish. Sixth International Conference EAFP. Brest. France, September 5−10, 1993. Abstr-Brest. 1993.P. 99.

130. Dannevig B.H., Falk K., Namork E. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in long-term cell line from Atlantic salmon. // J. Gen. Virol. 1995. V. 76. P. 1353−1359.

131. Daskalov H., Stoev S. Pathomorphological changes in rainbow trout fed with low-quality diets // Vet. Med. 1995. V. 2. P. 248−250.

132. Daskalov H., Grozeva N., Stoev S. Hepatic lipoidosis in rainbow trout {Oncorhynchus mykiss, Walbaum) — influence of pathomorphological changes upon flesh quality // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. V. 19(1). P. 20−23.

133. Davis H.S. Care and diseases of trout // Fish. Wildl. Serv. U. S. Res. Rep. 1946. V. 12. P. 1−98.

134. De Kikelin P., Hedrick R.P. International veterinary guidelines for the transport of live fish or fish eggs // Ann. Rev. Fish Dis. 1991. P. 27−40.

135. Drolet B.S., Rohovec J.S., Leong J.C. The route of entry and progression of infectious haematopoietic necrosis virus in Oncorhynchus mykiss (Walbaum): a sequential immunohistochemical study // J. Fish Dis. 1994. V. 17(4). P. 337−347.

136. Eaton V.D., Brunson R., True K. The first isolation in North America of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) and viral hemorrhagic septicemia (VHSV) in coho salmon from the same watershed // J. Aquat. Anim. Health. 1991. V. 3. P. 114−117.

137. Ekman E., Norrgren L.A.F. Pathology and immunohistochemistry in three species of salmonids after experimental infection with Flavobacterium // J. Fish Dis. 2003. V. 26, № 9. P. 529−538.

138. Ellis A.E., Wootten R. Costiasis of Atlantic salmon, Salmo salar L. smolts in seawater//J. Fish Dis. 1978. V. 1, № 4. P. 389−393.

139. Elston R.A., Kent M.L., Harrel L.H. An intranuclear microsporidium associated with acute anemia in the chinook salmon, Oncorhynchus tshawytscha И J. Protozool. 1987. V. 34, № 3. P. 274−277.

140. Emmenegger R.J., Kurath G. Genetic characterization of infectious hematopoietic necrosis virus of coastal salmonid stocks in Washington State // J. Aquat. Anim. Health. 2002. V. 14, № 1. P. 25−34.

141. Evelyn T.P., Traxler G.S. Viral erythrocytic necrosis: Natural occurrence in Pacific salmon and experimental transmission // J. Fish. Res. Bd. Can. 1978. V. 35. P. 903−907.

142. Ferguson H.W. The effect of water temperature on the development of proliferative kidney disease in rainbow trout Salmo gairdneri Richardson // J. Fish Dis. 1981. V. 4. P. 175−177.

143. Ferguson H.W. Systematic pathology offish. A text and atlas of comparative tissue responses in diseases of Teleosts. Iowa: Iowa State Univ. Press Ames. 1995. 267 p.

144. Ferguson H.W., Adair B.M. Protozoa associated with proliferative kidney disease in rainbow trout (Salmo gairdneri) II Vet. Rec. 1977. V. 100, № 1. P. 158.

145. Ferguson H.W., Needham E.A. Proliferative kidney disease in rainbow trout Salmo gairdneri Richardson // J. Fish Dis. 1978. V. 1. P. 91−108.

146. Ferguson H.W., Poppe Т., Speare D.J. Cardiomyopathy in farmed Norwegian salmon // Dis. Aquat. Org. 1990. V. 8, № 3. P. 225−231.

147. Fish pathology. London- Philadelphia- Sydney- Tokyo- Toronto: Stirling Univ., 1989. 383 p.

148. Fowler L.G. Starting diets for chinook salmon fry // Prog. Fish Cult. 1980. V. 42(3). P. 165−166.

149. Fryer J.L., Sanders J.E. Bacterial kidney disease of salmonid fish // Ann. Rev. Microbiol. 1981. V. 35. P. 273−298.

150. Fukuda H., Honma Т., Chou H.Y., Sano T. Infectious haematopoietic necrosis in Japan // Proceedings of the OJL International Symposium on Salmonid Diseases. -Sapporo: Hokkaido Univ. Press, 1992. P. 96−102.

151. Garver K.A., LaPatra S.E., Kurath G. Efficacy of an infectious hematopoietic necrosis (IHN) virus DNA vaccine in Chinook Oncorhynchus tshawytscha and sockeye O. nerka salmon // Dis. Aquat. Org. 2005. V. 64. P. 13−22.

152. Ghittino P., Anderietto S., Vigliani E. The amoebiasis of hatchery rainbow trout // Riv. Ital. Di Piscicult. e Ittiopathol. 1977. V. 12, № 3. p. 74−89.

153. Golovina N.A., Golovin P.P. Intracytoplasmic inclusions in erytrocytes of Pacific salmon // Aquatic and marine animal health: Second bilateral conference, Shepherdstown, West Virginia, 21−28 September, 2003. Michigan: Michigan State Univ., 2003. P. 353.

154. Groberg W.J., Hedrick R.P., Fiyer J.L. Viral diseases of salmonid fish in Oregon // Proceeding of the North Pacific Aquaculture Symposium, Anchorage, August 1980. -Anchorage: Alaska Dep. Fish Game. Div. Commer. Fish., Manag. Develop, 1980. P. 345- 357.

155. Gutierres M.C., Barros M.L. Antibiotic resistance of Pseudomonas fluorescens strains isolated from farmed rainbow trout (Oncorhunchus mykiss) in Spain // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1998. V. 18(5). P. 168−171.

156. Halbell S.O., Hodgins H.O., Schiewe M.H. Studies on the pathology of vibriosis in coho salmon (Oncorhynchus kisutch) 111. Fish Dis. 1979. V. 2. P. 527−535.

157. Halpenny C.M., Kocan R.M., Winton J.R., Perry J.A. Elevated temperature exacerbates Ichthyophonus infections in buffalo sculpin // Amer. Fish. Soc. Fish Health. 2002. V. 30(2). P. 17−20.

158. Halver J.E. The vitamins // Fish nutrition. New York: Acad. Press, 1972. P. 29 103.

159. Hatai K. Saprolegniasis in salmonids // Fish Pathol. 1980. V. 14. P. 199−206.

160. Hatai K., Egussa S., Nakajima M., Chikahata H. Pseudomonas chlororapis as a fish pathogen//Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1975. V. 41. P. 1203−1207.

161. Hatai K., Hoshiai G. Mass mortality in cultured coho salmon (iOncorhynchus kisutch) due to Saprolegnia parasitica Coker//J. Wildl. Dis. 1992. V. 28. P. 532−536.

162. Hattenberger-Baudouy A.M., Danton M., Merle G., Kinkelin P. Serum neutralization test for tepidemiological studies of salmonid rhabdoviruses in France // J. Vet. Res. 1995. V. 26. P. 512−520.

163. Hauck A.K. A mortality and associated tissue reactions of chinook salmon Oncorhynchus tshawytscha (Walbaum), caused by the microsporidian Loma sp. II J. Fish Dis. 1984. V. 7. P. 217−229.

164. Hedrick R.P., Groff J.M., McDowell T.S. Hematopoietic intranuclear microsporidian infections with features of leukemia in chinook salmon Oncorhynchus tshawytscha II Dis. Aquat. Org. 1990. V. 8. P. 189−197.

165. Hedrick R.P., Kent M.L., Rosemark R., Manzer D. Proliferative kidney disease (PKD) in Pacific salmon and steelhead trout // J. World Mar. Soc. 1984. V. 15. P. 318−325.

166. Hedrick R.P., Monge D., De Kinkelin P. Transmission of PKX, the causative agent of proliferative kidney disease (PKD), to rainbow trout Oncorhynchus mykiss following filtration of water and sediment // Dis. Aquat. Org. 1992. V. 14. P. 237−240.

167. Hetrick F.M., Fraer J.L., Knittel M.D. Effect of water temperature on the infection of rainbow trout Salmo gairdneri Richardson with infectious hematopoietic necrosis virus // J. Fish Dis. 1979. V. 2 (3). P. 253−257.

168. Hill B.J. Impact of viral diseases of salmonid fish in the European community // Proceedings of the OJL International Symposium on Salmonid Diseases. Sapporo, 21−25 October 1991. Sapporo: Hokkaido Univ. Press. 1992. P. 48−59.

169. Hilton J.W. The interaction of vitamins, minerals and diet of fish // Aquaculture. 1989. V. 79. P. 219−257.

170. Hoffman G.L. Whirling disease of trout in North Amarica // U.S. Amer. Fish. Soc. Trout News. 1966. V. 23. P. 6−7.

171. Holt R.A., Piacentini S. Erythrocytic inclusion body syndrome: (summary report prepared for the Pacific Northwest Fish Health Protection committee). Corvallis: Oregon Dep. Fish Wildl, 1989. 58 p.

172. Huizinger H.W., Esch G.W., Hazen T.C. Histopathology of red-sore disease (Aeromonas hydrophila) in naturally and experimentally infected largemouth bass Micropterus salmonides (Lacepede) // J. Fish Dis. 1979. V. 2. P. 263−277.

173. Jones S.R.M., Dawe S.C. Ichthyophonus hoferi Plehn & Mulsow in British Columbia stocks of Pacific herring, Clupea pallasi Valenciennes, and its infectivity to chinook salmon, Oncorhynchus tshawytscha (Walbaum) // J. Fish Dis. 2002. V. 25. P. 415−421.

174. Karas N., Lorenzen E. Elimination of Flexibacter psycrophilus from trout eggs by disinfection with iodine // Diseases of Fish and Shellfish: Sixth International Conference EAFP. Brest. France, September 5−10, 1993. Abstr. Brest. 1993. P. 55.

175. Kent M.L. Diseases of seawater netpen-reared salmonid fishes in the Pacific northwest // Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. 1992. V. 116. 76 pp.

176. Kent M.L., Elliot D.C., Groff J.M., Hedrick R.P. Loma salmonae (Protozoa: Microspora) infections in seawater reared coho salmon Oncorhynchus kisutch II Aquaculture. 1989. V. 80. P. 211−222.

177. Kent M. L, Groff J.M., Morrison J.K. Spiral swimming behaviour due to cranial and vertebral lesions associated with Cytophaga psychrophila infections in salmonid fishes // Dis. Aquat. Org. 1992. V. 6. P. 11−16.

178. Kent M.L., Whitaker D.J., Margolis L. Sphaerospora sp. in sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) and its association with the PKX myxosporean // Amer. Fish. Soc. Fish Health. 1993a. V. 2, № 2. P. 12−13.

179. Kinkelin P., Gerard J.P.L. Hepatonephrite parasitaire de la truite arc-en-cicl // Bull. Int. Epizoot. 1977. V. 87. P. 489−490.

180. Knott R.M., Munro A.L.S. The persistence of infectious pancreatic necrosis virus in Atlantic salmon, Salmo salar II J. Vet. Immunol. Immunopath. 1986. V. 12. P. 359−364.

181. Kocan R.M., Hershberger P., Mehl Т., Elder N. Pathology of Ichthyophonus hoferi for laboratory-reared Pacific herring Clupea pallasi and its early appearance in wild Puget Sound herring // Dis. Aquat. Org. 1999. V. 35. P. 23−29.

182. Kocylowski B. Choroby rub i ich knalkanie // Gespodarka rybna. 1953. V. 1. P. 2427.

183. Koren C.W.R., Nylund A. Morphology and morphogenesis of infectious salmon anaemia virus replicating in the endothelium of Atlantic salmon Salmo salar II Dis. Aquat. Org. 1997. V. 29. P. 99−109.

184. MacConnel E., Peterson J.E. Proliferative kidney disease in feral cutthroat trout from a remote Montana reservouir: A first case // J. Aquat. Anim. Health. 1992. V. 4. P. 182−187.

185. Mallatt G. Fish gill structure changes induced by toxicants and other irritants: A statistical review // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1985. V. 42. P. 630−648.

186. Manning M.G., Grace M.F., Secombes C.J. Developmental aspects of immunity and tolerance in fish // Microbial Diseases Fish. London: Academic Press, 1974. P. 31−46.

187. Margolis L., Evelyn T.P.T. Ceratomyxa shasta (Myxosporidia) disease in chum salmon {Oncorhynchus keta) in British. Columbia // J. Fish. Res. Bd. Can. 1975. V. 32. P. 1640−1643.

188. Margolis L., McDonald Т.Е., Hoskins G.E. Absence of the protozoan Myxosoma cerebralis (Myxozoa: Myxosporea), the cause of whirling disease, in a survey of salmonids from British Columbia // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1981. V. 38. P. 996−998.

189. McCarthy D.H. Fish fiirunculosis //J. Instit. Fish. Manag. 1975. V. 6. P. 13−18.

190. McKenzie D.J. Effects of dietary fatty acids on the respiratory and cardiovascular physiology of fish//Сотр. Biochem. Physiol. 2001. V. 128, № 3. p. 605−619.

191. McLoughlin M.F., Kennedy S., Kennedy D.G. Vitamin E-responsive myopathy in rainbow trout fry (Oncorhynchus mykiss) II Vet. Rec. 1992. V. 130. P. 224−226.

192. McVicar A.H., McLay H.A. Tissue response of plaice, haddock and rainbow trout to the systemic fungus Ichthyophonus II Fish and shellfish pathology. London: Crown, 1985. P. 329−346.

193. McVicar A.E. Pancreas disease of farmed Atlantic salmon, Salmo salar, in Scotland: epidemiology and early pathology // Aquaculture. 1987. V. 67. P. 71−78.

194. Meyer F.P. Branchiomycosis: a new fungal disease of North American fishes // Prog. Fish-Cult. 1973. V. 35. P. 74−77.

195. Miyazaki Т., Kaige N.A. A histopathological study on motile aeromonad disease of Crusian carp//Fish Pathol. 1985. V. 21. P. 181−185.

196. Miyazaki Т., Kubota S.S. Studies on Ichthyophonus disease of fishes. Life cycle of Ichthyophonus affected rainbow trout // Bull. Fac. Fish. Mie Univ. 1979. V. 4. P. 67−80.

197. Moccia R.D., Hung S.S.O., Slinger S.T., Ferguson H.W. Effect offish oil, vitamin E and ethoxyquin on the histopathology and hematology of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson // J. Fish Dis. 1984. V. 7. P. 269−282.

198. Mulcahy D.M. Control of mortality caused by infectious hematopoietic necrosis virus // Proceedings of a workshop on viral diseases of salmonid fishes in the Columbia River Basin. Portland, Oregon. 1983. P. 51−71.

199. Mulcahy D.M., Pascho R.J., Jenes U.S. Detection of infectious haematopoietic virus in river water and demonstration of waterborne transmission // J. Fish Dis. 1983. V. 6. P. 321−330.

200. Mulcahy D.M., Pascho R.J. Vertical transmission of infectious hematopoietic necrosis virus in sockeye salmon, Oncorhynchus nerka (Walbaum): isolation of virus from dead eggs and fry // J. Fish Dis. 1985. V. 8. P. 393−396.

201. Mullins J.E., Groman D., Wadowska D. Infectious salmon anemia in salt water Atlantic salmon (Salmo salar L.) in New Brunswick, Canada // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1998. V. 18(4). P. 110−114.

202. Muroga K., Jo Y., Nishibuchi M. Pathogenic Vibrio isolated from cultured eels. I. Characteristics and taxonomic status // Fish Pathol. 1976a. V. 12. P. 141 -145.

203. Muroga K., Nishibuchi M., Jo Y. Pathogenic Vibrio isolated from cultured eels. II. Physiological characteristics and pathogenicity // Fish Pathol. 1976b. V. 12. P. 147 -151.

204. Nematollahi A., Decostere A., Pasmans F., Haesebrouck F. Flavobacterium psychrophilum infections in salmonid fish // J. Fish Dis. 2003. V. 26. P. 563−574.

205. Noga E.J. Fish Disease: diagnosis and treatment. St. Louis, Missouri: Mosby-YearBook. Inc., 1996. P. 188−191.

206. Novak В., Elliott D.G., Bruno D.V. The identification of parasites in fish tissue sections // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2002. V. 22 (2). P. 173−177.

207. Okamoto N., Nakase K., Sano T. Relationships between water temperature, fish size, infective dose and Ichthyophonus infection in rainbow trout // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1987. V. 53. P. 581−584

208. Park M.A., Sohn S.G., Lee S.D., Chun S.K., Park J.W., Fryer J.L., Hah Y.C. Infectious hematopoietic necrosis virus from salmonids in Korea // J. Fish Dis. 1993. V. 16. P. 471−478.

209. Pilcher K.S., Fryer J.L. The viral diseases of fish: a review through 1978. Part 1: Diseases of proven viral etiology // CRC Crit. Rev. Microbiol. 1980a. V. 7. P. 287−363.

210. Pilcher K.S., Fryer J.L. The viral diseases of fish: a review through 1978. Part 2: Diseases in which a viral etiology is suspected but unproven // CRC Crit. Rev. Microbiol. 1980b. V. 8. P. 1−24.

211. Piper R.G., McElwain I.B., Orme L.E., McCraren J.P., Fowler L.G., Leonard J.R. Fish Hatchery Management. Washington: Department Fisheries Hatchery Division, 1982. 18 p.

212. Poppe T.T., Seierstad S.L. First description of cardiomyopathy syndrome (CMS)-related lesions in wild Atlantic salmon Salmo salar in Norway // Dis. Aquat. Org. 2003. V. 56, V. 1. P. 87−88.

213. Poppe T.T., Taksdal T. Ventricular hypoplasia in farmed Atlantic salmon Salmo salar II Dis. Aquat. Org. 2000. V. 42, № 1. P. 35−40.

214. Post G. Textbook offish health. Neptune City: T.F.H. Publ., Inc. Ltd, 1987. 288 p.

215. Rand T.G., Cone D.G. Effect of Ichthyophonus hoferi on condition indices and blood chemistry of experimentally infected rainbow trout {Oncorhynchus mykiss) II J. Wildl. Dis. 1990. V. 26. P. 323−328.

216. Ransom D.P., Lannan C.N., Rohovec J.S., Fryer J.L. Comparison of histopathology caused by Vibrio anguillarum and Vibrio ordalii in the three species of Pacific salmon // J. Fish Dis. 1984. V. 7. P. 107−115.

217. Robertson D.A., Roberts R. J., Bullock A.M. Pathogenesis and autoradiographic studies of epidermis of salmonids infested with Ichthyobodo necator (Henneguy, 1883) // J. Fish Dis. 1981. V. 2. P. 113−125.

218. Rodger H.D., Drinan E.M., Murphy T.M., Lunder T. Observation on erythrocytic inclusion body syndrome in Ireland // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1991. V. 11. P. 108−111.

219. Rodger H.D. Production diseases in salmon aquaculture // Conference Aquaculture '98. Las Vegas, NV (USA), 15−19 Feb. 1998: Abstr. Las Vegas: World Aquaculture Society. State Univ. Baton Rouge LA 70 803 USA, 1998. P. 446.

220. Rodger H.D., Richards R.H. Observational study of erythrocytic inclusion bodies in farmed Atlantic salmon, Salmo salar L., in the British islands // J. Fish Dis. 1998. V. 21. P. 101−111.

221. Rodger H.D., Turnbull Т., Muir F., Millar S. Richards R.H. Infectious salmon anemia (ISA) in the United Kingdom // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1998. V. 18(4). P. 115 116.

222. Ross A.J., Pelnar J., Rucker R.R. A virus-like disease of chinook salmon // Trans. Amer. Fish. Soc. 1960. V. 89. P. 160−163.

223. Ross A.J., Rucker R.R., Ewing W.H. Description of a bacterium associated with redmouth disease of rainbow trout {Salmo gairdneri) II Can. J. Microbiol. 1966. V. 12. P. 763−770.

224. Rucker R.R., Whipple W.J., Parvin J.R., Evans C.A. A contagious disease of sockeye salmon possibly of virus origin // U.S. Fish Wildl. Serv. Fish. Bull. 1953. V. 54. P. 35−46.

225. Sanders J.E., Fryer J.L., Gould R.W. Occurrence of the myxosporidian parasite Ceratomyxa shasta, in salmonid fish from the Columbia river basin and Oregon coastal streams //Amer. Fish. Soc. Spec. Publ. 1970. V. 5. P. 133−141.

226. Sano Т., Nishimura Т., Okamoto N., Yamazaki Т., Hanada H., Watanabe Y. Studies on viral disease of Japanese fish VI. Infectious haematopoietic necrosis (IHN) of salmonids in the mainland of Japan //J. Tokio Univ. Fish. 1977. V. 63. P. 81−85.

227. Sarti M., Giorgettii G. A survey of Flexibacteroisis (or Cytophaga LB. diseases) on trout farms // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1996. V. 16 (1). P. 8−12.

228. Schaperclaus W. Fischkrankheiten. Berlin: Akademie Verlag, 1979. 135 p.

229. Schlotfeldt H. J, Neumann W., Fuhrmann H., Pfortmueller K., Boehm H. Remarks on increasing resistance of fishpathogenic and facultative-fishpathogenic bacteria in Lower Saxony (FRG) // Fish Pathol. 1985. V. 9. P. 85−91.

230. Schmidt-Posthaus H., Wahly T. First report of Ichthyophonus hoferi infection in wild brown trout (Salmo trutta) in Switzerland // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2002. V. 22(3). P. 225−228.

231. Seagrave C.P., Bucke D., Alderman D. Ultrastructure of a Haplosporean-like organism: the causative agent of proliferative kidney disease in rainbow trout // J. Fish Biol. 1980. V. 4. P. 437−439.

232. Seagrave C.P., Bucke D., Hudson E.B., McGregor D. A survey of the prevalence and disrtibution of proliferative kidney disease (PKD) in England and Wales // J. Fish Dis. 1981. V. 4. P. 453−459.

233. Sindermann C.J. Principal diseases of marine fish and shellfish. Oxford, Maryland: Academic Press, 1990. V. 1. 521 p.

234. Sindermann C.J. Principal diseases of marine fish and shellfish. New York: Academic Press, 1990. V. 2. P. 9−99.

235. Smail D.A., Bruno D.W., Dear G., McFarlane L., Ross K. Infectious pancreatic necrosis (IPN) virus Sp serotype in farmed Atlantic salmon post-smolts associated with mortality and clinical disease // J. Fish Dis. 1992. V. 15. P. 77−83.

236. Smith C.E., Morrison J.K., Ramsey H.W., Ferguson H.W. Proliferative kidney disease: first imported outbreak in North America // J. Fish Dis. 1984. V. 7. P. 207−216.

237. Snieszko S.F. Fish furunculosis // U.S. Fish Wildl. Serv. Fishery Leaflet. 1958. V. 467. P. 1−4.

238. Snieszko S.F. The effects of environmental stress on outbreaks of infectious diseases of fishes // J. Fish Biol. 1974. V. P. 197−208.

239. Soltani M., Fadaii F.F., Mehrabi M.R. First report of a yersiniosis-like infection in Iranian farmed rainbow trout // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. V. 19(4). P. 173−176.

240. Speare D.J., Ferguson H.W. Clinical and pathological features of common gill diseases of cultured salmonids in Ontario // J. Can. Vet. 1989. V. 30. P. 882−887.

241. Stoskopf M.K. Fish medicine. Philadelphia- London- Toronto- Montreal- Sydney- Tokyo: W.B. Saunders company, Harcourt Brace Jovanovich Inc., 1993. P. 79−90.

242. Tajima K., Yoshimizu M., Ezura Y., Kimura T. Studies on the causative organisms of vibriosis in Japan//Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1981. V. 47. P. 3512.

243. Takahashi K., Okamoto N., Kumagai A., Maita M., Ikeda Y., Rohovec J.S. Epizootics of erythrocytic inclusion body syndrome in coho salmon cultured in seawater in Japan // J. Aquat. Anim. Health. 1992. V. 4. P. 174−181.

244. Thorud K., Djupvik H.O. Infectious anemia in Atlantic salmon (Salmo salar) II Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1992. V. 8. P. 109−111.

245. Traxler G.S. An epizootic of infectious hematopoietic necrosis in 2-er-old kokanee, Oncorhynchus nerka (Walbaum) at Lake Cowichan, British Columbia // J. Fish. Dis. 1986. V. 9. P. 545−549.

246. Traxler G. S., Rankin J.B. An infectious hematopoietic necrosis epizootic in sockeye salmon Oncorhynchus nerka in Weaver Creek spawning channel, Fraser River system, ВС, Canada//Dis. Aquat. Org. 1989. V. 6. P. 221−226.

247. Troyer R.M., Kurath G. Molecular epidemiology of infectious hematopoietic necrosis virus reveals complex virus traffic and evolution within southern Idaho aquaculture // Dis. Aquat. Org. 2003. V. 55, № 3. P. 175−185.

248. Trust T.J. The bacterial population in vertical flow tray hatcheries during incubation of salmonid eggs //J. Fish Res. Bd. Can. 1972. V. 29. P. 567−571.

249. Trust T.J. Bacteria associated with the gills of salmonid fishes in freshwater // J. Appl. Bacteriol. 1975. V. 38. P. 22−23.

250. Yamamoto Т., Batts W.N., Arakawa C.K., Winton J.R. Multiplication of infectious hematopoietic necrosis virus in rainbow trout following immersion infection: whole body assay // J. Aquat. Anim. Health. 1990. V. 2. P. 271−280.

251. Yasutake W.T. Comparative histopathology of epizootic salmonid virus diseases // Amer. Fish. Soc. Spec. Publ. 1970. V. 5. P. 341−350.

252. Yasutake W.T. Fish viral diseases: clinical, histopathological, and comparative aspects // The pathology of fishes. Madison: Univ. Wisconsin Press, 1975. P. 247−271.

253. Yasutake W.T. Histopathology of yearling sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) // Fish Pathol. 1979. V. 4. P. 59−64.

254. Yasutake W.T., Wales J.H. Microscopic anatomy of salmonids: An Atlas. -Washington: U.S. Fish Wildl. Serv., 1983. 190 p.

255. Uno M. Effects of seawater acclimation on juvenile salmonids infected with Tetraonchus (Monogenea) and Ichthyophonus (Phycomycetes) // Fish Pathol. 1990. V. 25. P. 15−19.

256. Urawa S. Effects of enviromental stress on the mortality of chum salmon fry infected with Ichthyobodo necator И In actual problems in fish parasitology. Budapest: Hungarian Academy of Sciences, 1987. P. 99.

257. Urawa S. Epidermal responses of chum salmon (Oncorhynchus keta) fry to the ectoparasitic flagellate Ichthyobodo necator II Can. J. Zool. 1992a. V. 70, № 8. P. 15 671 575.

258. Urawa S. Host range and geographical distribution of the ectoparasitic protozoans Ichthyobodo necator, Trichodina truttae and Chilodonella piscicola on hatchery-reared salmonids // Sci. Rep. Hokkaido Salmon Hatchery- 1992b. V. 46. P. 175−203.

259. Wedemeyer G.A., Wood J.W. Stress as predisposing factor in fish diseases //U.S. Fish Wildl. Serv., Fish. Leaflet. 1974. V. 38. P. 1−7.

260. Wiklund Т., Bylund G. Pseudomonas anguilliseptica as a pathogen of salmonid fish in Finland // Dis. Aquat. Org. 1990. V. 8. P. 13−19.

261. Wiklund Т., Sazonov A., Liniova G.P., Pugaeva V.P., Zoobaha S.V., Bylund G. Characteristics of Aeromonas salmonicida subsp. salmonicida isolated from Pacific salmonidscin Kamchatka, Russia // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1992. V. 12. P. 46−79.

262. Wingfield W.H., Fryer J.L., Pilcher K.S. Properties of the sockeye salmon virus (Oregon strain) // Proceeding of the Society for Experimental Biology and Medicine. 1969. № 130. P. 1055−1059.

263. Wingfield W.H., Chan L.D. Studies on the Sacramento river chinook disease and its causative agent//Amer. Fish. Soc. Spec. Publ. 1970. V. 5. P. 307−318.

264. Williams I.V., Amend D.F. A natural epizootic of infectious hematopoietic necrosis in fry of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) at Chilko Lake, British Columbia // J. Fish. Res. Bd. Can. 1976. V. 33(7). P. 1564−1567.

265. Wolf К. Fish viruses and fish viral diseases. Ithaca- London: U.S. Fish Wildl. Serv., 1988. 478 p.

266. Wolf K., Quimby M.C., Carlson C.P., Bullock G.L. Infectious pancreatic necrosis: selection of virus-free stock from a population of carrier trout // J. Fish. Res. Bd. Can. 1968. V. 25. P. 383−391.

267. Wolke R.E. Pathology of bacterial and fungal disease affecting fish / In Ribelin W.E., Migaki G. eds: Fish Pathology. Madison: Univ. of Wisconsin Press, 1975. P. 33 116.

268. Woo P.T.K., Bruno D.W. Fish diseases and disorders // Viral, bacterial and fungal infections. V. 3. 1999. P. 57−121.

269. Wood E.M., Yasutake W.T. Histopathologic changes of a virus-like disease of sockeye salmon // Trans. Amer. Microsc. 1956. V. 76. P. 85−90.

270. Zhao Z., Niu L. Isolation and preliminary study of a rhabdovirus from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Benxi, China // Acta Hydrobiol. 1994. V. 18, № 4. P. 348−353.

Заполнить форму текущей работой